Információ

Lepidoptera azonosítása

Lepidoptera azonosítása


We are searching data for your request:

Forums and discussions:
Manuals and reference books:
Data from registers:
Wait the end of the search in all databases.
Upon completion, a link will appear to access the found materials.

Attól tartok, az alábbi televíziós kép minősége nem túl jó, de valaki be tudja azonosítani ezt a lepkét? Egyike volt azoknak, akik a 2016. július 10-i párizsi Eb-döntőn behatoltak a pályára.


Nem néztem a meccset, de az interneten látottak alapján a Silver Y volt (Autographa gamma), amelyet a fények rajzoltak oda vándorlás közben http://theconversation.com/moths-expert-match-report-on-ronaldo-insect-encounter-at-euro-2016-final-62314


Egyedül a kép alapján nem lehettem teljesen biztos benne, ezért utánanéztem, és kiderült, hogy ez egy Autographa Gamma (ezüst Y)


A kukorica kalászos lepkék kártevőinek biológiája és kezelése Nebraskában

Négy lepkék kártevő, amelyekkel a kukoricakalászon táplálkozva találkozhat Nebraskában, az európai kukoricabogár (Ostrinia nubilalis), nyugati babcukorka (Striacosta albicosta), kukorica fülféreg (Helicoverpa zea), és őszi seregféreg (Spodoptera frugiperda).

Európai kukoricabogár

Western Bean Cutworm


Kukorica fülféreg

Őszi seregféreg

• A lapos, ovális, gombostűfej nagyságú tojások fehérről feketére válnak kikelés előtt

• A fehéresszürke lárvák kis barna/fekete foltokkal és fényes fekete fejjel rendelkeznek

• A sárgás nőstények és a sötétebb hímek szárnyain hullámos sávok vannak

• A gombostűfej méretű tojások gyöngyházfehérből lilára válnak kikelés előtt

• A fiatal, sötétbarna lárvák hátán halvány gyémántszerű nyomok láthatók

• A szürkétől a rózsaszínig terjedő, idősebb lárvák feje mögött két barna téglalap található

• A felnőttek szárnyaikon világos barna csík, fehér „szemfolt” és fehér ív alakú folt található

• Az apró tojások világossárgák

• A lárvák színe változó, de a testük mentén váltakozó világos és sötét csíkok és sötét dudorok vannak

• A kupola alakú tojások piszkosfehértől szürkésig terjednek, és penészes vagy szőrös megjelenésűek

• A sötétzöld lárvák oldalukon és hátukon sárga/narancssárga csíkok, fejükön pedig fehér, fejjel lefelé fordított Y alakú jelölés található.

• Szürkés, foltos imágóknál fehér foltok láthatók a szárnyvégek közelében

• Tavasszal lárvaként telel át a kukoricaszáron és bebábozódik

• A nőstények a kukoricalevelek alsó oldalára rakják a tojásokat, gyakran a növény középső harmadába

• A címerezés előtt jelenlévő lárvák a szár alsó részére költöznek

• A lárvák a szárba vagy a kalászba való alagútba való bojtozás után jelennek meg

• Évente két generáció Nebraskában

• Előbábként telel át a talajban

• A nőstények a kukoricalevelek felső oldalára rakják a tojásokat

• A fiatal lárvák virágporral, bojtszövettel vagy zöld selymekkel táplálkoznak

• Az idősebb lárvák a kalászokba jutnak, hogy a fejlődő magokkal táplálkoznak, mielőtt a talajba hullanak, hogy bebábozódjanak.

• Bábként telel át a talajban, de nem Nebraskában

• A felnőttek minden évben visszatérnek délről

• A nőstények egyenként rakják a tojásokat a fülselyemre

• A lárvák a kalászokba vándorolnak, hogy a fejlődő szemekkel táplálkozhassanak, mielőtt a talajba hullanak, hogy bebábozódjanak

• Évente több generáció melegebb éghajlaton

• Általában két generáció évente Nebraskában

• Bábként telel át a talajban, de nem Nebraskában

• A felnőttek minden évben visszatérnek délről

• A nőstények az éretlen növényi levelekre rakják tojásaikat

• A lárvák örvényszövetből vagy alagútból táplálkoznak közvetlenül a kalászokba, hogy a fejlődő szemekkel táplálkozhassanak, mielőtt a talajba hullanak, hogy bebábozódjanak.

• Évente több generáció melegebb éghajlaton

• Általában két generáció évente Nebraskában

• Állami szinten, de leggyakrabban a középső és nyugati régiókban

• Gyakori azokon a területeken, ahol összefüggő kukorica- vagy homokos talaj uralkodik

• Megtámadja a cirokot, szóját, gyümölcsöt és zöldségféléket is

• Állami szinten, de leggyakrabban keleten

• Megtámadja a szójababot és néhány apró szemcsét is

• 1. gen: június végétől július elejéig

• 2. generáció: július vége, augusztus, néha szeptember eleje

• A lárvák júliustól szeptemberig találhatók

• A felnőttek júniusban és júliusban érkeznek délről

• A lárvák július végén és szeptemberben találhatók

• A felnőttek júniusban és júliusban érkeznek délről

• A lárvák július végén és szeptemberben találhatók

• 1. gen.: „lövésszerű” megjelenésű örvények és környező levelek

• 2. generáció: fülszárak, szárak és csövek etetési sérülésekkel és belépési nyílásokkal

• Sérült fülek, amelyek több lárvát is tartalmazhatnak

• A sérült fül másodlagos gombás fertőzése lehet

• 2. gen: Sérült fülek, amelyek általában egyetlen lárvát tartalmaznak

• A sérült fül másodlagos gombás fertőzése lehet

• 1. gen.: Sérült örvényű, lombtalanító és satnya növények

• 2. gen: Sérült fül, potenciálisan másodlagos gombás fertőzéssel

Cserkészajánlások

***Ne feledje, hogy a lepkék repülési csúcsa feromon- és fénycsapdákkal határozható meg, és felhasználható a terepi felderítő programok tájékoztatására.

• 1. gen.: Vizsgáljon meg 25 kukoricapörgőt mind a 4 helyen minden területen

• Számolja meg a tápkárosodott növényi örvények számát és az élő lárvák számát növényenként

• Számítsa ki az élő lárvák átlagos számát sérült növényenként!

• 2. gen.: Válasszon ki 10 növényt mind az 5 helyen minden területen, és számolja meg a tojástömegeket

• Fontolja meg a kezelést, ha a tojástömegű növények 25-50%-os gazdasági küszöbértékét túllépik, és a kukorica hólyagos vagy korábban van.

• Válasszon ki 10 növényt minden tábla 5 vagy több területén

• Vizsgálja meg a kukoricalevelek felszínét a növény felső harmadában a tojástömeg szempontjából, a bojtot, a levélhónaljokat és a kalászcsúcsokat pedig a fiatal lárvák számára.

• A kezelés akkor javasolt, ha a növények 5-8%-a tojással vagy lárvával fertőzött, és a kukorica legalább 95%-a bojtos.

• Ha a kukorica a tojásrakás előtt tejes állapotban van, nincs szükség kezelésre

• A zöld selymesedés időszakában ellenőrizze a selymeket, hogy vannak-e tojások, és a fülcsúcsokat a kis lárvák számára

• A szántóföldi kukorica kezelése általában gazdaságilag nem indokolt

• A vetőmag, a pattogatott kukorica és a csemegekukorica kezelést igényelhet

• Cserélje fel a későn ültetett területeket, amint elérik a V5-V8-at

• Vizsgálja meg a fülcsúcsokat lárvák jelenlétére

• A kezelési küszöbértékek a lombhullás szintjén és a lárvák fülbe jutásának lehetőségén alapulnak

Vezetési ajánlások

***Ne feledje, hogy a peszticidek alkalmazása csak akkor hatásos, ha azok elérik a lárvákat, mielőtt a szárba (ECB) vagy a fülbe (WBC, CEW és FAW) bejutnának.

• Ültessen kukoricát a következő tulajdonságok közül egy vagy többel: Cry1Ab, VIP3A, Cry1F, Cry1A.105 és Cry2Ab2.

• Fontolja meg olyan helyben adaptált fajták ültetését, amelyek némileg ellenállnak az EKB-nak és jól hoznak.

• Az EKB bármelyik generációjának kezelésével kapcsolatos döntés bonyolult, kérjük, olvassa el a megfelelő NebGuide-ot útmutatásért.

• Ültessen kukoricát VIP3A vagy Cry1F tulajdonságokkal.

• Vegye figyelembe, hogy a Cry1F hatékonysága bizonyos területeken csökkent, a DuPont Pioneer már nem tünteti fel a WBC-t a Cry1F által ellenőrzött kártevőként.

• A Scout Cry1F mezőket azokon a területeken, ahol csökkent hatékonyságot figyeltek meg, például Nebraska délnyugati részén és középső részén, fontolja meg a kezelést, ha a küszöbértékeket túllépi.


Jelenlegi kutatási projektek

A Lepidoptera ivarmeghatározásának kromoszómális és molekuláris mechanizmusai

A lepkék és lepkék (Lepidoptera) ivarkromoszómarendszerei nőstény heterogametiával rendelkeznek (WZ/ZZ, Z/ZZ), de az ivarmeghatározás tényleges mechanizmusa nagyrészt ismeretlen. Csak a közelmúltban fedezték fel az elsődleges nemet meghatározó tényezőt a selyemhernyóban, Bombyx mori. W kromoszómája kódolja a Fem piRNS, amely elősegíti a nőiességet egy Z-kapcsolt gén expressziójának leszabályozásával, Férfiasító, elősegítve a férfiak fejlődését W hiányában. Azonban vad selyemmolyokat eredményez Samia Cynthia spp. megkérdőjelezi a W szerepét a női nem meghatározásában, és támogatja a Z-számlálási mechanizmust. Éppen ellenkezőleg, legutóbbi eredményeink arra utalnak, hogy a Fem piRNA/Masc Az útvonal megőrződött piralid lepkékben. Ezért tanulmányozzuk az ivarmeghatározás molekuláris mechanizmusait stabil WZ/ZZ rendszerrel, valamint nélkülözhetetlen vagy hiányzó W-vel rendelkező fajokban. Az ivarmeghatározó gének ortológjait azonosítjuk, expressziójukat és funkciójukat transzkriptom szekvenciák és a rendelkezésre álló molekuláris genetikai módszerek segítségével elemezzük. Célunk, hogy hozzájáruljunk a Lepidoptera ivarmeghatározásának evolúciójának megértéséhez.

A Lepidoptera nemi kromoszómáinak molekuláris differenciálódása és evolúciós története

A nemi kromoszómák és differenciálódásuk az evolúciós genetika legérdekesebb kérdései közé tartoznak. Állatoknál a nemi kromoszóma evolúciójára vonatkozó adatok túlnyomó többségét hím heterogametiával (azaz XY ivari kromoszással rendelkező) élő szervezetekben szerezték.ome rendszerek), például legyek és emlősök. Sokkal kevesebbet tudunk a női heterogametiával rendelkező organizmusokról, amelyek WZ nemi kromoszómarendszerrel vagy annak változataival rendelkeznek. Ez különösen vonatkozik a lepkékre és a lepkékre (Lepidoptera), a legnagyobb nőstény heterogametiával rendelkező állatcsoportra. A kiválasztott modellekben a lepkék genomjainak fizikai jellemzőit tanulmányozzuk, konzervált gének szinténiás térképezését végezzük, és megvizsgáljuk a nemi kromoszómák molekuláris differenciálódását azzal a céllal, hogy feltárjuk a lepke kariotípusok evolúciós történetét, és hozzájáruljunk a nemi kromoszóma evolúciójának általános mechanizmusainak megértéséhez.

Általános stratégiák kidolgozása kártevő Lepidoptera genetikai ivaros törzsek létrehozására

Az elmúlt 25 év során a Sterile Insect Technique-t (SIT) sikeresen alkalmazták több jelentős lepkártevő ellen. Azok a programok, amelyek SIT-t használnak e kártevők populációinak szabályozására, a biszexuális kibocsátásokra támaszkodnak. A csak férfiaknak szánt kiadások jelentősen csökkenthetik a költségeket és növelhetik a SIT hatékonyságát. Mindazonáltal egyetlen lepkék kártevő esetében sem áll rendelkezésre kényelmes genetikai ivarmeghatározási rendszer, amely csak hím utódokat hozhatna létre. Mi vagyunk általános stratégiák kidolgozása a genetikai ivarmeghatározó törzsek létrehozására Lepidoptera-ban kétféle módon: (1) egy feltételesen letális gén beépítésével a nőstény-specifikus W ivarkromoszómába genomszerkesztéssel a női embriók fejlődésének megszakítására, és (2) azonosítással Az ivarmeghatározásban részt vevő géneket, azzal a céllal, hogy új lehetőségeket találjanak a genetikai nemi meghatározásra. Legfőbb modellfajként a gyékénylepkét használjuk, Cydia pomonella, amely a világ mérsékelt égövi vidékein a leveles gyümölcs- és dióültetvények egyik legfontosabb kártevője. Ez a kutatás a NAÜ (Bécs, Ausztria) által koordinált nemzetközi projekt része.

Lepidoptera genomokat és ivari kromoszómákat alakító ismétlődések azonosítása és elemzése

Az ismétlődő DNS az eukarióta genomok velejárója. Ismeretes, hogy a tandem ismétlődések döntő szerepet játszanak a kromoszóma integritásának és működésének fenntartásában, mivel centromerekben és telomerekben fordulnak elő. Ezek a genomok leggyorsabban fejlődő szekvenciái is. A mobil elemek, az önző DNS több mechanizmuson keresztül alakítják a genomot, amelyek pl. a géntranszkripciós mintázat megváltoztatására vagy szerkezeti kromoszóma-rendellenességek létrehozására. Gyakran kompakt genomiális régiókban, azaz heterokromatinban fordulnak elő. A lepkékben és lepkékben általában az egyetlen nagy heterokromatin blokk a W kromoszóma, a nőstényekre jellemző ivari kromoszóma, amelyről ismert, hogy génszegény és ismétlődésekben gazdag. Ebben a projektben olyan ismétlődő szekvenciákat tanulmányozunk, amelyek hozzájárulnak a W-kromoszóma degenerációjához különböző családok képviselőinél, mint például a Pieridae, Geometridae és Noctuidae, azzal a céllal, hogy észleljük a lehetséges inter- és intraspecifikus variabilitást mind az egyedi ismétlődések helyében, mind abundanciájában. W és máshol a genomban, és végül azonosítja azokat a mechanizmusokat, amelyek a W és Z kromoszómák diverzifikációját eredményezik. Ebből a célból a férfi és női genomok összehasonlító elemzését végezzük olyan bioinformatikai eszközökkel, mint a RepeatExplorer és a Tandem Repeats Finder. A kiválasztott ismétlődéseket ezután fluoreszcenciával térképezzük fel in situ hibridizációt (FISH), hogy megmutassák pontos elhelyezkedésüket a kromoszómákon.

ábra: Repetitív DNS elemzése Lepidoptera-ban. a) Az összehasonlító genomi hibridizáció azonosítja a W kromoszómát Tischeria ekebladella (Tischeriidae). b) Egy mikroműhold FISH-térképezése Lomaspilis marginata (Geometridae) a FISH által. c) W-vel dúsított műholdszekvencia FISH-leképezése Pieris napi (Pieridae). d) A heterokromatin blokkok jelenlétének és tartalmának változékonysága L. marginata FISH és DAPI festéssel derült ki. Ban ben b, c, és d, a kromoszómák DAPI-val (kék) ellenfestettek, a próbák hibridizációs jelei pirosak. Bár = 10 um


Tartalom

A Holometabola felsőrend többi tagjához hasonlóan a Lepidoptera teljes metamorfózison megy keresztül, négy szakaszból álló életcikluson megy keresztül: tojás, lárva / hernyó, báb / chrysalis és imago (többes szám: elképzeli) / felnőtt. [9]

A lepkék mérete a néhány milliméteres hosszúságtól – például a mikrolepidopterák esetében – a sok centiméteres szárnyfesztávolságig terjed, mint például az Atlaszlepke és a világ legnagyobb pillangója, Alexandra királynő madárszárnya. [10] : 246

Általános testterv Szerk

A kifejlett lepke vagy lepke (az imágó) testének három különálló részlege van, amelyeket tagmáknak neveznek, és ezek a tagmák szűkületekkel kapcsolódnak össze: a fej, a mellkas és a has. A kifejlett lepkéknek négy szárnya van - egy elülső és egy hátsó szárny a mellkas bal és jobb oldalán egyaránt -, és mint minden rovarnak, három pár lába van. [11]

A morfológiai jellemzők, amelyek megkülönböztetik a Lepidoptera rendet a többi rovarrendtől: [10]: 246

  • Fej: A fej nagy, összetett szemekkel rendelkezik, és ha vannak szájrészek, akkor szinte mindig szívószál-szerű ormányról van szó.
  • Mérleg: A pikkelyek a test külső felületét és a függelékeket borítják.
  • Mellkas: A prothorax általában csökkent.
  • Szárnyak: Szinte minden taxonban két pár szárny található. A szárnyakon nagyon kevés keresztirányú ér található.
  • Has: A hátsó hasi szegmensek a szaporodáshoz jelentősen módosultak. Cerci hiányzik.
  • Lárva: A Lepidoptera lárvái hernyóként ismertek, fejük és állkapcsaik jól fejlettek. Nulla-öt pár proleg lehet, általában négy.
  • Báb: A bábok a legtöbb fajnál adektikusak (a bábállapotban nincsenek funkcionális állcsontok) és obtectek (a függelékekkel egybeolvadt vagy a testhez ragasztva vannak), míg mások decticusok (a funkcionális mandibulák bábállapotban vannak) és exarátusak (a bábállapotban vannak). antennák, lábak és szárnyak mentesek).

Megkülönböztető taxonómiai jellemzők Szerk

A lepkefajok, nemzetségek és családok osztályozására használt fő jellemzők a következők: [12]

  • a szájrészeket
  • a szárnyak alakja és szellőzése
    • hogy a szárnyak homoneruszok (az elülső és hátsó szárnyak szellőzése egyformán) vagy heteroneurikusak (az elülső és hátsó szárnyak eltérőek)
    • hogy a szárnyak hegyesek (többé-kevésbé speciális sörtékkel, úgynevezett microsetae-vel borítva) vagy nem sörték
    • a szárnycsatlakozás típusa (jugate vagy frenate)

    Az osztályozáshoz használt hernyók és bábok morfológiai jellemzői teljesen eltérnek a kifejlett egyedekétől [13]: 637 [14] esetenként külön-külön különböző osztályozási sémákat biztosítanak az imágók, lárvák és bábok osztályozására. [14] [15] : 28–40 Az éretlen állapotok jellemzőit egyre gyakrabban használják taxonómiai célokra, mivel betekintést nyújtanak a Lepidoptera szisztematikába és törzsfejlődésébe, amely a kifejlett egyedek vizsgálatából nem derül ki. [15] : 28

    Mint minden állatfej, a lepke vagy lepke feje tartalmazza a táplálkozási szerveket és a fő érzékszerveket. A fej jellemzően két antennából, két összetett szemből, két palpiból és egy orrból áll. [11] A Lepidoptera szemhéja lehet, hogy látható vagy nem. Érzékszervi struktúráik is vannak ún chaetosemata, melynek funkciói nagyrészt ismeretlenek. A fejet nagyrészt az agy, a szívópumpa és a hozzá tartozó izomkötegek töltik ki. [16] Az imágókkal ellentétben a lárváknak egyszegmensű állkapcsa van. [16]

    A fej kapszula jól szklerotizált és számos szkleriták vagy lemezek, egymástól elválasztva varratok. A szkleriteket nehéz megkülönböztetni sulci (egyes szám - sulcus), amelyek másodlagos megvastagodások. A fej régióit számos területre osztották, amelyek topográfiai útmutatóként szolgálnak a lepkék leírásához, de fejlődésük szempontjából nem különböztethetők meg. [16] A fejet szőrszerű vagy lamellás pikkelyek borítják, és vagy csomók formájában találhatók meg a frontok vagy csúcs (a továbbiakban durva léptékű) vagy a fejhez közel nyomva (a továbbiakban: sima léptékű).

    A fejen található érzékszervek és struktúrák nagy változatosságot mutatnak, e szerkezetek alakja és formája, valamint jelenléte vagy hiánya fontos taxonómiai mutató a taxonok családokba sorolásához. [13]

    A Gracillariidae családba tartozó lepkék feje, amely a fejen a pikkelyek kiterjedését mutatja

    Durva pikkelyű lepkefej Monopis icterogastra (Tineidae család)

    Sima pikkelyes lepkefej Stegasta variana (Gelechiidae család)

    Antenna Szerkesztés

    Az antennák kiemelkedő páros függelékek, amelyek előrenyúlnak az állat szemei ​​között, és számos szegmensből állnak. A lepkék esetében a hossza az elülső szárny hosszának felétől az elülső szárny hosszának háromnegyedéig változik. A lepkék antennái vagy karcsúak és a hegyükön gömbölyűek, a Hesperiidae esetében pedig a csúcson horgosak. Néhány lepke nemzetségben, mint pl Libythea és Taractrothera a gomb alul vájt. [11] A lepkeantennák vagy filiform (tetszik a téma), unipectinate (fésűszerű), bipektinát (tollszerű), kampós, dúsított vagy megvastagodott. [13] : 636 Bombyx mandarina egy példa a bipektinát antennákkal. [17] Egyes lepkéknek a lepkékhez hasonló antennájuk van, beleértve a Castniidae, Neocastniidae és Euschemonidae családokat. [18]

    Az antennák a Lepidoptera elsődleges szaglási (szaglási) szervei. Az antenna felületét nagyszámú szaglópikkely borítja, szőrszálak vagy gödrök találhatók egy uralkodó antennáin, akár 1 370 000. Az antennák rendkívül érzékenyek A Saturniidae, Lasiocampidae és sok más családba tartozó hím lepkék tollas antennái annyira érzékenyek, hogy akár 2 km-es távolságból is képesek észlelni a nőstény lepkék feromonjait. A Lepidoptera antennái sokféle pozícióban dőlhetnek el.Segítik a rovart az illat megtalálásában, és egyfajta „szaglóradarként” is funkcionálhatnak. [6] A lepkékben a hímek gyakran tollazatosabbak, mint a nőstényeké, és így távolról észlelik a nőstény feromonokat. [7] Mivel a nőstényeknek nem kell észlelniük a hímeket, egyszerűbb antennájuk van. [6] Azt találták, hogy az antennák szerepet játszanak az idővel kompenzált napiránytű tájolásában is a vándorló uralkodólepkékben. [19]

    Eyes Edit

    A lepkéknek két nagy, mozdíthatatlan összetett szeme van, amelyek nagyszámú fazettából vagy lencséből állnak, amelyek mindegyike egy lencseszerű hengerhez kapcsolódik, amely az agyba vezető ideghez kapcsolódik. [11] Minden szemnek akár 17 000 egyedi fényreceptora (ommatidia) is lehet, amelyek együttesen széles mozaikképet biztosítanak a környező területről. [6] Az egyik trópusi ázsiai család, az Amphitheridae, összetett szemei ​​két különálló szegmensre oszlanak. [13] [20] A szemek általában simaak, de apró szőrszálak fedhetik őket. A pillangók szeme általában barna, aranybarna vagy akár vörös, mint egyes kapitányfajok esetében. [11]

    Míg a legtöbb rovarnak három egyszerű szeme vagy ocelluja van, a Lepidoptera összes fajában csak két szem található, néhány lepke kivételével, egy-egy a fej mindkét oldalán, az összetett szem széle közelében. Egyes fajokon az ocellu közelében találhatók a chaetosemata nevű érzékszervek. [11] [21] Az ocelluszok nem homológok a hernyók egyszerű szemeivel, amelyeket másképpen szárnak neveznek. [5] A Lepidoptera ocellusai egyes családokban, ahol jelen vannak, külsőleg csökkentek, de nem fókuszáltak, ellentétben a teljesen fókuszált lárvák száraival. Az ocelli hasznosságát jelenleg nem értik. [5]

    A lepkék és a lepkék képesek látni az ultraibolya (UV) fényt, és a szárnyak színeit és mintáit elsősorban a Lepidoptera figyeli meg ezeken a fényhullámokon. [13] A szárnyukon UV-fényben látható minták jelentősen eltérnek a normál fényben látottaktól. Az UV-mintázatok vizuális jelzésekként működnek, amelyek segítik a fajok megkülönböztetését a párzás céljából. Vizsgálatokat végeztek a Lepidoptera (többnyire lepkék) UV fénnyel megvilágított szárnyain. [13]

    Palpi Edit

    Jellemzően a szeméremajkak kidomborodnak, három tagúak, a fej alól erednek és az arc előtt felfelé görbülnek. [7] A lepkék különböző családjaiban nagy eltérések mutatkoznak a szeméremajkak morfológiájában, néha a palpi különálló, néha pedig connivent és csőrt alkotnak, de mindig egymástól függetlenül mozgathatók. Más esetekben előfordulhat, hogy a labiális palpi nem felálló, de igaz (vízszintesen előre vetítve). [11] [13] A palpi egy rövid bazális szegmensből, egy viszonylag hosszú központi szegmensből és egy keskeny terminális részből áll. Az első két szegmens sűrűn méretezett, és lehet, hogy a végszegmens csupasz. A végszegmens lehet tompa vagy hegyes, és egyenesen vagy szögben állhat ki a második szegmensből, amelyen belül elrejthető. [11]

    Szájrészek szerkesztése

    Míg az állkapocs vagy az állkapocs (rágó szájrész) csak a hernyóstádiumban van jelen, a legtöbb kifejlett Lepidoptera szájrésze főként a szívófélékből áll, ezt a részt ormánynak, ill. haustellum. Néhány Lepidoptera fajnak csökkent a szájszerve, és kifejlett állapotban nem táplálkoznak. Mások, mint például a Micropterigidae alapcsalád, rágó szájszervekkel rendelkeznek. [21]

    A ormány (többes szám – ormány) maxilláris galeákból alakul ki, és nektárszívásra alkalmas. [3] Két csőből áll, amelyeket horgok tartanak össze, és tisztítás céljából szétválaszthatók. Mindegyik cső befelé homorú, így egy központi csövet képez, amelyen felszívja a nedvességet. A szívás a fejben lévő zsák összehúzódásán és kitágulásán keresztül történik. [11] Az orr a feje alá tekeredett, amikor a rovar nyugalomban van, és csak táplálkozáskor nyújtja meg. [16] A maxilláris palpi csökkent, sőt vestigialis. Feltűnőek, és néhány alapcsaládban öt tagúak, és gyakran össze vannak hajtva. [7]

    Az orr alakja és méretei úgy alakultak, hogy a különböző fajok szélesebb és ezáltal előnyösebb táplálékot kapjanak. [3] Allometrikus skálázási kapcsolat van a Lepidoptera testtömege és a ormány hossza között [22], amelyből érdekes adaptív eltérés a szokatlanul hosszú nyelvű szfinxmoly. Xanthopan morganii praedicta. Charles Darwin a régóta sarkantyús madagaszkári csillagorchideáról szerzett ismeretei alapján megjósolta e lepke létezését és orchideájának hosszát a felfedezése előtt. Angraecum sesquipedale. [23]

    A Lepidoptera-ban alapvetően két táplálkozó céh létezik: a nektárevők, akik tápanyagszükségletük nagy részét virágnektárból szerzik be, és a gyümölcsevő céhé, akik elsősorban rothadó gyümölcslevekkel vagy erjedő fanedvekkel táplálkoznak. Lényeges különbségek vannak a két etetőcéh ormányának morfológiája között. A sólyommolyok (Sphingidae család) hosszúkás orrúak, amelyek lehetővé teszik számukra, hogy táplálkozzanak és beporozzák a hosszú csőszerű corollas virágokat. Ezen kívül számos taxon (különösen az éjszakai lepkék) eltérő ormánymorfológiát alakított ki. Egyes noktuid fajok szúrós szájszerveket fejlesztettek ki, az orr hegyén szklerotizált pikkelyek vannak, amelyek segítségével vért vagy gyümölcsleveket szúrhat és szívhat. Némelyikben proboscisis Heliconius fajok szilárd anyagok, például pollen fogyasztására fejlődtek ki. [24] Egyes más molylepkék, főként éjszakai lepkék, módosított ormányzattal rendelkeznek, hogy megfeleljenek táplálkozási módjuknak – könnyfagia (alvó madarak könnyeivel táplálkozik). A száron gyakran éles csúcsok vannak, valamint számos tüske és sarkantyú található a száron. [25] [26]

    Pásztázó elektronmikroszkópos felvétel a Pyralidae családba tartozó lepke ormányáról

    Sara hosszúszárnyú (Heliconius sara), egy a sok közül Heliconius faj, amelyről ismert, hogy virágporral táplálkozik, virágporral a szárán

    Xanthopan morganiiafrikai szfingidának van egy láb hosszú orchideája, amely az orchidea táplálására alkalmas Angraecum sesquipedale

    A könnyes lepkék, mint például a két Julia pillangó (Dryas iulia), akik az ecuadori teknősök könnyeit isszák, horgokkal és horgokkal rendelkeznek a orr hegyén.

    A mellkas, amely a lárva 2., 3. és 4. szegmenséből fejlődik ki, három láthatatlanul felosztott szegmensből áll, nevezetesen a prothoraxból, a metathoraxból és a mesothoraxból. [11] A rovarok mozgásszervei – a lábak és a szárnyak – a mellkason vannak. A mellső lábak a prothoraxból erednek, az elülső és a középső lábpár a mesothoraxon, a hátsó szárnyak és a hátsó lábak pedig a metathoraxon erednek. Egyes esetekben a szárnyak maradványok. [11] [27]

    A mellkas felső és alsó része (terga és sterna) szegmentális és intraszegmentális szkleritekből áll, amelyek másodlagos szklerotizálódást és jelentős módosulást mutatnak a Lepidoptera-ban. A prothorax a legegyszerűbb és legkisebb a három szegmens közül, míg a mesothorax a legfejlettebb. [27]

    A fej és a mellkas között van a hártyás nyak ill méhnyak. Ez egy pár oldalsó nyaki szkleritből áll, és mind a feji, mind a mellkasi elemekből áll. [10] : 71 [27] A fej és a mellkas között van egy bojtos pikkely, az úgynevezett pronotum. Mindkét oldalon egy pajzsszerű pikkely, az úgynevezett lapocka található. [11] A Noctuoideában a metathorax egy pár dobhártyaszervvel módosul. [7]

    Leg Edit

    A Papilionoidea elülső lábai különböző formájú csökkenést mutatnak: a Nymphalidae pillangók családjának, vagy közismert nevén ecsettalpú pillangóknak csak a hátsó két lábpárja van teljesen működőképes, az elülső pár erősen lecsökkent, és nem képes járni vagy ülni. A Lycaenidae esetében a tarsus nem tagolt, mivel a tarsomerák összeolvadtak, és hiányoznak a tarsalis karmok. Az aroliaris párna (egyes rovarok tarsalis karmai közé kiálló párna) és a pulvillus (egyes számban: pulvillus, párna vagy lebeny minden tarsalis karom alatt) a Papilionidae esetében csökkent vagy hiányzik. A tarsalis karmok szintén hiányoznak a Riodinidae-nál. [28]

    A Lepidoptera esetében a három lábpárt pikkelyek borítják. [13] A Lepidoptera lábán szaglószervek is találhatók, amelyek elősegítik a tápláléknövények „ízlését” vagy „szagát”. [6]

    Wings Edit

    A kifejlett lepkéknek két pár hártyás szárnya van, amelyeket általában teljesen apró pikkelyek borítanak. A szárny felső és alsó membránból áll, amelyeket apró szálak kötnek össze, és megvastagodott üreges bordák rendszere erősíti meg, amelyeket népiesen, de helytelenül "vénáknak" neveznek, mivel légcsöveket, idegrostokat és ereket is tartalmazhatnak. [11] [29] A membránokat apró pikkelyek borítják, amelyeknek szaggatott végei vagy szőrszálai vannak, és horgokkal vannak rögzítve. A szárnyakat a mellkas gyors izomösszehúzódása és kitágulása mozgatja. [11]

    A szárnyak a mezo- és metathoracalis szegmensekből származnak, és hasonló méretűek a bazális csoportokban. A származtatottabb csoportokban a mezo-mellkasi szárnyak nagyobbak, tövükön erősebb az izomzat, és merevebb érszerkezet a borda szélén. [7]

    A repülés elsődleges funkciója mellett a szárnyak másodlagos önvédelmi, álcázási és hőszabályozási funkciókat is ellátnak. [3] [30] Egyes Lepidoptera családokban, mint például a Psychidae és Lymantriidae, a szárnyak csökkentek vagy hiányoznak (gyakran a nőstényeknél, de nem a hímeknél). [7]

    Alak szerkesztése

    A Lepidoptera esetében a szárnyak alakja igen változatos. A Papilionoidea esetében a koszta lehet egyenes vagy erősen ívelt. A hátsó szárnyon néha homorú. Az elülső szárnyon esetenként fűrészes vagy apró fűrészes fogazatú. A csúcs lehet lekerekített, hegyes vagy falkát (alul előállított és homorú). A terminus az elülső szárnyon egyenes vagy homorú, míg a hátsó szárnyon általában többé-kevésbé domború. A terminus gyakran crenulate vagy fogazott, azaz mindegyik vénánál keletkezik, és közöttük homorú. A hát általában egyenes, de lehet homorú is. [11]

    A hátsó szárny gyakran farok alakú, azaz a tornus vége közelében lévő ereknek egy vagy több farka van. Maga a tornus gyakran előáll és gyakran karéjos. [11] A hátulsó szárny mentén szorosan egymásra tömött pikkelyek helyezkednek el, kettős sorban. A pikkelyek alsó része szabályos keskeny peremet alkot, amelyet csillóknak neveznek. [11]

    A tollaslepkék (Pterophoridae család) szárnya hasított

    A sok tollazatú lepkékben (Alucitidae család) a szárnyak mindegyik ér mentén széthasadnak

    A Gelechioidea mikrolepkéi, mint pl Palumbina guerinii, a hátsó szárnyak mentén szőrszerű rojtok vannak

    Madagaszkári naplemente lepke farkú hátsó szárnyai (Chrysiridia rhipheus Uraniidae család)

    Lycaenidák, például a majomrejtvény (Rathinda amor) fonalas farkúak, amelyeket a "hamis fej" hipotézissel próbálnak megmagyarázni [31]

    Hialin foltok egy kolibri sólyommoly, a hóbogyó tisztás szárnyain (Hemaris diffinis)

    Pachyerannis obliquaria, párosodó pár – felül szárnyas hím, alul kis szárnyatlan nőstény

    Venation Edit

    A kétrétegű hártyás szárnyon csöves erek futnak keresztül. A vénák a hemocoelhez kapcsolódnak, és elméletileg lehetővé teszik a hemolimfa átáramlását rajtuk. Ezenkívül egy ideg és a légcső áthaladhat a vénákon. [29]

    A lepkék lélegeztetése egyszerű, mivel kevés a keresztléc. [15] : 88 A Lepidoptera szárnyas vénája a taxonok, valamint a nemzetségek és családok megkülönböztetésének diagnosztikája. [13] A terminológia a Comstock-Needham rendszeren alapul, amely a rovarok szárnyának morfológiai leírását adja. [32] A bazális Lepidoptera esetében az elülső szárny erezete hasonló a hátsó szárnyéhoz, ezt az állapotot "homoneurous"-nak nevezik. A Micropterigidae (Zeugloptera) állománya a legprimitívebb szúnyogfélékre (Trichoptera) hasonlít. Az összes többi Lepidoptera túlnyomó többsége (körülbelül 98%) "heteroneurous", a hátsó szárny erezete eltér az elülső szárnyétól, és néha kicsinyített. Többek között a Nepticulidae, Opostegidae, Gracillariidae, Tischeriidae és Bucculatricidae családba tartozó lepkék mindkét szárnyában gyakran jelentősen csökkentik a szellőzést. [13] : 635 [32] : 56 A homoeurós lepkék általában a szárnycsatolás "jugum" formájával rendelkeznek, szemben a "frenulum-retinaculum" elrendezéssel a fejlettebb családok esetében.

    Rovarszárny-szellőztetés, a Comstock–Needham rendszer neveivel

    Szárnycsatlakozás Szerk

    A Lepidoptera morfológiai szárnykapcsoló mechanizmusok széles skáláját fejlesztette ki az imágóban, amelyek ezeket a taxonokat „funkcionálisan kétszárnyúvá” (kétszárnyúvá) teszik. [33] A legalapvetőbb formák kivételével mindegyikben megtalálható ez a szárnycsatlakozás. [34] Három különböző típusú mechanizmus létezik – jugal, frenulo-retinacular és ampplexiform. [35]

    A primitívebb csoportok a bazális hátsó perem közelében (azaz az elülső szárny tövénél) egy megnagyobbodott lebenyszerű területtel rendelkeznek, amelyet ún. kancsó, amely repülés közben a hátsó szárny alá hajtódik. [7] [34] Más csoportoknál van egy frenulum a hátsó szárnyon, amely az elülső szárnyon lévő retinaculum alá akad. [7]

    Minden lepkében (a hím Euschemoninae kivételével) és Bombycoidea lepkében (a Sphingidae kivételével) nincs frenulum és retinaculum elrendezése a szárnyak összekapcsolásához. Ehelyett a hátsó szárny megnagyobbodott felkarcsontját nagymértékben átfedi az elülső szárny. A speciális mechanikai kapcsolat hiánya ellenére a szárnyak átfedik egymást és fázisban működnek. Az elülső szárny erőlökete egyszerre nyomja le a hátsó szárnyat. Ez a fajta csatolás a frenate típus egy változata, de a frenulum és a retinaculum teljesen elveszett. [33] [36]

    A Lepidoptera szárnyai apró pikkelyűek, ez adja ennek a rendnek a nevét Lepidoptera Carl Linnaeus alkotta meg 1735-ben a „négy pikkelyes szárnyú rovarok” csoportja számára. Az ógörögből származik lepis (λεπίς) jelentése "(hal) pikkely" (és rokon lepein "hámozni") és pteron (πτερόν) jelentése "szárny". [37]

    A pikkelyek a fejet, a mellkas és a has részeit, valamint a nemi szervek részeit is lefedik. A pikkelyek morfológiáját J. C. Downey és A. C. Allyn (1975) [38] tanulmányozta, és a pikkelyeket három csoportba sorolták, nevezetesen hajszerű, ill. piliform, pengeszerű, ill lamellás és egyéb változó formák. [8]

    A primitív lepkék (nem Glossata és Eriocranidae) "szilárd" pikkelyekkel rendelkeznek, amelyek perforálatlanok, azaz nincs lumenük. [8]

    A Lepidoptera testvércsoportját képező Trichoptera (caddisflies) néhány taxonjának szőrszerű pikkelyei vannak, de mindig a szárnyakon, és soha nem a testen vagy a rovar más részein. [13] A caddisflies hasüregén is vannak faroküregek, amely a Lepidoptera esetében hiányzik. [7] Scoble (2005) szerint [8] "morfológiailag a pikkelyek makrotrichiumok, és így homológok a Trichoptera (caddisflies) szárnyait borító nagy szőrszálakkal (és pikkelyekkel).

    Szerkezet szerkesztése

    Bár a méretarányos formák nagy változatosságot mutatnak, mindegyik hasonló szerkezettel rendelkezik. A pikkelyek, más makrochaetákhoz hasonlóan, speciális trichogén (szőrt termelő) sejtekből származnak, és van egy foglalata, amely egy speciális "tormogén" cellába záródik [15] : 9 ez az elrendezés szárat, ill. kocsány amellyel pikkelyeket rögzítenek az aljzathoz. A pikkelyek lehetnek pilia alakúak (szőrszerűek) vagy laposak. A tipikus lapított pikkely teste vagy „pengéje” egy felső és alsó lamellából áll, amelyek között légrés található. A test felé eső felület sima és az úgynevezett alsóbbrendű lamella. A felső felület, ill kiváló lamella, keresztirányú és hosszanti gerincekkel és bordákkal rendelkezik. A lamellákat az úgynevezett támaszok tartják egymástól trabakulák és színt adó pigmenteket tartalmaznak. A pikkelyek kissé lazán tapadnak a szárnyhoz, és könnyen leválnak anélkül, hogy károsítanák a pillangót. [8] [13] [39]

    Színszerkesztés

    A lepkeszárnyak pikkelyei melaninokkal pigmentáltak, amelyek fekete és barna színt tudnak előállítani. A Pieridae pillangók családjába tartozó fehér szín a húgysav származéka, amely egy kiválasztó termék. [13] [40] : 84 Az élénk kékek, zöldek, vörösek és az irizáló színek általában nem pigmentek, hanem a pikkelyek mikrostruktúrája révén jönnek létre. Ez a szerkezeti elszíneződés a skálák fotonikus kristályos jellege által a fény koherens szórásának eredménye. [41] [42] [43] A speciális skálák, amelyek szerkezeti színeket adnak a visszavert fénynek, többnyire ultraibolya mintákat hoznak létre, amelyek az ultraibolya spektrum azon részén észlelhetők, amelyet a lepkék szeme láthat. [13] A látható szerkezeti szín gyakran a látószögtől függ. Például be Morpho cypris, a szín elölről élénkkék, de szögből nézve nagyon gyorsan feketévé változik. [44]

    Az irizáló szerkezeti elszíneződés számos lycaenid és papilionid faj szárnyán, mint pl. Parides sesostris és Teinopalpus imperialis, és a lycaenidák, mint pl Callophrys rubi, Cyanophrys remus, és Mitoura gryneus, tanulmányozták. [45] Az ismert legösszetettebb fotonikus skála-architektúrákat mutatják meg – szabályos háromdimenziós periodikus rácsokat, amelyek egyes skálák lumenében fordulnak elő. [46] A Kaiser-i-Hind esetében (Teinopalpus imperialis), a háromdimenziós fotonikus szerkezetet transzmissziós elektrontomográfiával és számítógépes modellezéssel vizsgálták, hogy feltárják a természetben előforduló "királis tetraéderes ismétlődő egységeket, amelyek triklinikus rácsba vannak csomagolva", [47] [48] az irizálódás okát.

    Szerkezeti kék színben morpho cypris, nimfalida

    Amikor ugyanaz Morpho cypris a minta a végén látható, a kék szín feketévé válik.

    A fehér szín a pieridekben, mint pl Delias eucharis a húgysav származéka, kiválasztó termék.

    A fecskefarkú Kaiser-i-Hind zöld irizálója (Teinopalpus imperialis) a háromdimenziós fotonikus kristályszerkezet felfedezéséhez vezetett.

    Egyes Lepidoptera szárnyak színe lehetővé teszi az álcázást, ahogy az a geometrikus lepkék esetében is látható Colostygia aqueata.

    Funkció szerkesztése

    A pikkelyek fontos szerepet játszanak a Lepidoptera természetrajzában. A mérlegek lehetővé teszik élénk vagy homályos minták kialakítását, amelyek segítik a szervezetet, hogy megvédje magát álcázással, mimikával és figyelmeztetéssel.A szigetelés mellett a szárnyak sötét mintái lehetővé teszik a napfény elnyelését, és valószínűleg részt vesznek a hőszabályozásban. A ragadozók számára gusztustalan lepkék élénk és jellegzetes színmintái segítik toxicitásukat vagy ehetetlenségüket kommunikálni, így megakadályozzák a ragadozást. A batesi mimikában a szárnyak színmintái segítenek az ehető lepkéknek utánozni az ehetetlen modelleket, míg a Mülleri mimikában az ehetetlen lepkék hasonlítanak egymásra, hogy csökkentsék a tapasztalatlan ragadozók által mintavételezett egyedek számát. [8]

    A mérlegek kezdetben a szigetelés biztosítására fejlődhettek ki. A mellkason és a test más részein lévő pikkelyek hozzájárulhatnak a repülés során szükséges magas testhőmérséklet fenntartásához. A bazális lepkék "szilárd" pikkelyei azonban nem olyan hatékonyak, mint fejlettebb rokonaik, mivel a lumen jelenléte levegőrétegeket ad, és növeli a szigetelés értékét. [8] A mérlegek repülés közben is segítenek növelni az emelés/ellenállás arányt. [8]

    A legtöbb mirmekofil Lycaenidae újonnan megjelent imágója számára a lombhullató viaszos pikkelyek védelmet nyújtanak a ragadozók ellen, amint azok kibújnak a fészekből. [8] A lepkelepke esetében (Liphyra brassolis), a hernyók nem szívesen látott vendégek a hangyalárvákkal táplálkozó fahangyák fészkeiben. A bábokból kinőtt imágókat puha, laza tapadó pikkelyek borítják, amelyek a hangyákra dörzsölődnek és rátapadnak, amikor kikelés után kijutnak a fészekből. [49]

    Androconia Edit

    A hím lepkék különleges pikkelyekkel rendelkeznek, az úgynevezett androconia (egyes szám - androkónium), amelyek szexuális szelekció eredményeként alakultak ki, hogy feromonokat terjesszenek a megfelelő társak vonzására. Az androconia a szárnyakon, a testen vagy a lábakon szétszórva fordulhat elő, vagy foltokban, amelyeket "márkáknak", "szexuális márkáknak" vagy "stigmáknak" neveznek a szárnyakon, általában az elülső szárnyak felső felületének invaginációiban, amelyeket néha elrejtenek egyéb mérlegek. Ismeretes, hogy az androconia a szárnyak redőiben is előfordul. Ezek a márkák néha szőrszerű csomókból állnak, amelyek megkönnyítik a feromon diffúzióját. Az androconia szerepe a pierid és nymphalid lepkék udvarlásában, mint pl Pyronia tithonus és Dryas iulia, kísérletileg bebizonyosodott. [15] : 16–17 [50] [51] [52] [53]

    Egymást követő közeli felvételek egy pávaszárny pikkelyeiről

    Fényképészeti és fénymikroszkópos képek
    Kicsinyített nézet egy Aglais io. Vértes ugyanannak a példánynak a pikkelyei. A színes pikkelyek nagy nagyítása (valószínűleg más faj).
    Elektronmikroszkópos képek
    Egy szárnyfolt Mérlegek közelről Egyetlen mérleg Egy skála mikroszerkezete
    Nagyítás kb. ×50 kb. × 200 ×1000 ×5000

    A has vagy a test kilenc szegmensből áll. A lárvában az 5-től a 13-ig terjedő szegmensig terjed. A lárva tizenegyedik szegmensében egy pár anális kapocs található, amelyek egyes taxonokban kinyúlnak és a nemi szerveket képviselik. [11]

    Sok lepkecsalád rendelkezik speciális szervekkel, amelyek segítik a denevérek visszhangjának észlelését. Ezeket a szerveket ún tympana (egyes szám - typanum). A Pyraloidea és szinte minden Geometroidea timpanája a has elülső szternitjén található. A Noctuoideáknak is van timpannájuk, de esetükben a timpanonok a metathorax alsó részén helyezkednek el, melynek szerkezete és elhelyezkedése egyedi, és a szupercsalád taxonómiai megkülönböztető jegye. [21] [54]

    Egyes lepkék nőstényeinek a has csúcsán található szagkibocsátó szerv. [6]

    Nemi szervek Szerkesztés

    A nemi szervek összetettek, és a legtöbb családban a fajok megkülönböztetésének alapját képezik, valamint a családazonosításban is. [7] A nemi szervek a has tizedik vagy legtávolabbi szegmenséből származnak. A lepkék az összes rovar közül a legbonyolultabb ivarszervi felépítésűek, a hímeknél sokféle összetett tüskével, csonkával, pikkelyekkel és csomókkal, különböző formájú kapcsokkal és a rovarok módosulásával rendelkeznek. ductus bursae nőstényeknél, amelyen keresztül a tárolt spermiumok a nőstényen belül közvetlenül vagy közvetve a hüvelybe jutnak megtermékenyítés céljából. [13] [55] [56]

    A nemi szervek elrendezése fontos az udvarlás és a párzás során, mivel megakadályozzák a keresztspecifikus párosodást és hibridizációt. Egy faj nemi szervének egyedisége miatt a nemi szervek morfológiai vizsgálatát használták, mint a családszint alatti taxonok taxonómiai azonosításának egyik legfontosabb kulcsát. A DNS-elemzés megjelenésével a nemi szervek vizsgálata mára csak egyike a taxonómiában használt technikáknak. [6]

    A legtöbb Lepidoptera esetében a nemi szervek három alapvető konfigurációja létezik, attól függően, hogy a nőstényeknél hogyan alakult ki a párzásra, megtermékenyítésre és tojásrakásra szolgáló nyílások elrendezése:

    • Exoporian: A Hepialidae-féléknek és a rokon családoknak van egy külső barázdája, amely a spermiumokat a kopulációs nyílástól (gonopórus) a (petepórus) szállítja, és exoporian-nak nevezik. [7]
    • Monotrysian: A primitív csoportoknak egyetlen genitális nyílása van a has végénél, amelyen keresztül a párzás és a tojásrakás is megtörténik. Ezt a karaktert a Monotrysia jelölésére használják. [7]
    • Ditrysian: A fennmaradó csoportoknak van egy belső csatornája, amely spermiumokat szállít és Ditrysia-t alkot, külön nyílásokkal a párzáshoz és a tojásrakáshoz. [7]

    A hím és a nőstény nemi szervei bármely adott fajnál úgy vannak kialakítva, hogy illeszkedjenek egymáshoz, mint egy zár (hím) és kulcs (nőstény). [6] A hímeknél a kilencedik hasi rész egy háti "tegumen" és a ventrális "viniculum" részre oszlik. [56] Gyűrűszerű szerkezetet alkotnak a nemi szervek és egy pár oldalsó kapocsszerv (kapcsok vagy "hárfa") rögzítésére. A hímnek van egy középső csőszerű szerve (aedeagus), amely egy örökké tartó hüvelyen (vagy "vesicán") keresztül nyúlik ki a nőstény megtermékenyítésére. [55] A hímeknek minden lepkében páros hímivarcsatornája van, a páros herék alap taxonjaiban különállóak, és fejlett formákban összenőttek. [55]

    Míg a belső nemi csatornák és a női nemi szervek nyílásainak elrendezése a rovarok rendszertani csoportjától függ, az összes lepkék belső női reproduktív rendszere páros petefészkekből és járulékos mirigyekből áll, amelyek a tojások sárgáját és héját termelik. A nőstény rovarok tartályokból és csatornákból álló rendszerrel rendelkeznek, amelyben a spermát fogadják, szállítják és tárolják. A nőstény petevezetékei összekapcsolódnak, és egy közös csatornát alkotnak (az úgynevezett "oviductus communis"), amely a hüvelybe vezet. [55] [56]

    Párosodáskor a hím lepke vagy lepke spermiumkapszulát (spermatofor) helyez a nőstény tartályába (úgynevezett corpus bursae). A sperma, amikor kiszabadul a kapszulából, közvetlenül egy kis csövön keresztül beúszik egy speciális ondótartályba (spermatheca), ahol a spermiumot addig tárolják, amíg a hüvelybe kerül megtermékenyítés céljából a tojásrakás során, ami órákon, napokon keresztül is előfordulhat. , vagy hónapokkal a párzás után. A tojások áthaladnak a petesejteken. A petehártya lehet egy módosított petehártya végén, vagy egy pár széles, szetóz anális papillával lehet körülvéve. [55] [56]

    A Parnassinae (Papilionidae család) és néhány Acraeini (Nymphalidae család) pillangói párzás utáni dugót, az úgynevezett sphragisokat adják a nőstény hasára a párzás után, megakadályozva a párosodást. [13]

    A Papilionoidea számos fajának hímjei másodlagos szexuális jellemzőkkel rendelkeznek. Ezek illatképző szervekből, kefékből és speciális mérlegek márkáiból vagy tasakjaiból állnak. Ezek feltehetően megfelelnek annak a funkciónak, hogy meggyőzzék a nőstényt arról, hogy a megfelelő fajhoz tartozó hímmel párosodik. [11]

    Három sólyommolyfajt jegyeztek fel, amelyek ultrahangos kattanást bocsátanak ki a hímek nemi szerveinek dörzsölésével, amelyek merev pikkelyek dörzsölésével a hímek külsején. kapcsok míg a nőstények a nemi szervük összehúzódásával hangot adnak ki, ami a pikkelyek dörzsölését okozza a hason. Ennek a zajkeltésnek a funkciója nem tisztázott, a javaslatok között szerepel a denevér visszhang zavarása, valamint annak hirdetése, hogy a denevér zsákmánya szúrós és kiváló repülő. [57]

    Citheronia regalis zárt kapcsokkal

    Apolló nőstény sphragis-szal vagy párzódugóval

    Közelkép a megkeményedett sphragisról, amely 2-3 mm-rel extrudál a hasa mögé Parnassius

    Cloaca Edit

    A Lepidoptera rovarok has végén egy kloáka található. Ez lehet teljes, magában foglalja a végbélnyílást, a petepórust és a kopulációs pórusokat, mint a Dacnonypha, a Zeugloptera és a Monotrysia többsége esetében, vagy hiányos, csak a végbélnyílást és a petepórust foglalja magában, amint az megtalálható néhány Monotrysia esetében, a Psychidae, és egyes Choreutidae és Cossidae. [58]

    A megtermékenyített petesejt megérik és kikel, hogy hernyót adjon. A hernyó a lepkék életciklusának táplálkozási szakasza. A hernyónak képesnek kell lennie táplálkozni, és el kell kerülnie, hogy megegyék, és morfológiájának nagy része úgy alakult, hogy megkönnyítse ezt a két funkciót. [59] : 108 A növekedés és az ecdysis után a hernyó egy ülő fejlődési szakaszba lép, amelyet bábnak (vagy chrysalisnak) neveznek, és körülötte burkot képezhet. A rovar a bábállapotban kifejlődik, amikor a báb kikel, és kialakul a lepke vagy lepke felnőtt állapota vagy imágója.

    Egg Edit

    A legtöbb rovarhoz hasonlóan a Lepidoptera is petesejtek vagy "tojásrétegek". [40] A lepkék tojásai, más rovarokéhoz hasonlóan, centrolecitálisak, mivel a tojások központi sárgájával rendelkeznek, amelyet citoplazma vesz körül. A sárgája biztosítja a folyékony táplálékot az embrióhernyó számára, amíg ki nem távozik a héjból. [60] A citoplazmát a vitteline burok zárja be, és egy fehérjeszerű membrán, az úgynevezett chorion védi a tojást kívülről. [60] [61] A zigóta magja hátul helyezkedik el. [61]

    Egyes Lepidoptera fajoknál viaszos réteg van jelen a chorion belsejében a vitelline réteg mellett, amelyről úgy gondolják, hogy a kiszáradás megakadályozására fejlődött ki. A rovaroknál a chorion légpórusokból álló réteggel rendelkezik az egyébként szilárd anyagban, amely nagyon korlátozott légzési funkciót biztosít. A Lepidoptera esetében a légpórusréteg feletti chorion réteg lamellás, egymást követő fehérjelapokkal, amelyek meghatározott irányban vannak elrendezve, és úgy lépkednek, hogy spirális elrendezést képezzenek. [61]

    A tojás teteje benyomódott, és egy kis központi üreget képez, amelyet mikropilának neveznek, amelyen keresztül a tojás megtermékenyül. [11] A gömbölyű, kúpos vagy hengeres tojások tetején található a mikropila a lapított vagy lencse alakú tojásokban, a mikropill pedig a külső peremen vagy peremen található. [18] [62]

    A Lepidoptera tojásai általában kerekdedek és kicsik (1 mm), bár a Sphingidae és Saturniidae esetében akár 4 mm-esek is lehetnek. [13] : 640 Általában meglehetősen sima színűek, fehérek, halványzöldek, kékeszöldek vagy barnák. A lepke- és lepketojások különböző formájúak, egyesek gömb alakúak, mások félgömb alakúak, kúposak, hengeresek vagy lencse alakúak (lencse alakúak). Egyesek hordó vagy palacsinta alakúak, míg mások turbán vagy sajt alakúak. Mindkét végén ferde vagy benyomott, bordázott vagy díszes, foltos vagy foltos lehet. [18] [62]

    A tojásokat egyenként, kis csoportokban vagy tömegben rakják le, és mindig a táplálékforráson vagy annak közelében. A fogságban tartott lepkékről ismert, hogy a ketrecekbe tojják a tojásokat. [18] [62] A Lepidoptera tojásméretét számos tényező befolyásolja. A tojásstádiumban áttelelő Lepidoptera fajok tojásai általában nagyobbak, mint azok, amelyek nem. Hasonlóképpen, a lárva állapotú fás szárú növényekkel táplálkozó fajok tojásai nagyobbak, mint a lágyszárúkkal táplálkozó fajok. Néhány lepkefaj idősebb nőstényei által lerakott tojások kisebbek, mint fiatalabb társaik. Megfelelő táplálkozás hiányában a kukoricabogárlepke nőstényei ( Ostrinia spp.) kimutatták, hogy a normálnál kisebb méretű tojásokat tojnak. [61]

    Szökés közben sok faj újonnan kikelt lárvái néha megeszik a choriont, hogy kikeljenek. Alternatív megoldásként a tojáshéjon lehet egy gyenge vonal a kalap körül, amely engedi, hogy a lárva kikeljen. [61] A tojáshéj és a magzatburokba zárt kis mennyiségű sárgája képezi a legtöbb lepkölárva első táplálékát.

    Úttörő tojások (Anaphaeis aurota Pieridae család)

    bíbor rózsa tojásai (Atrophaneura hector Papilionidae család)

    Mályva tojás kapitány (Carcharodus alceae Hesperiidae család)

    nagy réz tojás (Lycaena dispar Lycaenidae család)

    Egymás melletti ditrysian lepidoptera, kopaszciprus levélsodort tojásai (Archips goyerena Tortricidae család)

    Ditrysia lepke, holdlepke függőleges tojásai (Actias luna család Saturniidae) fogságba fektetett papíron

    fenyőkapocslepke tojásai (Bupalus piniaria Geometridae család)

    Lakásmoly tojásai (Malacosoma neustria Lasiocampidae család)

    Caterpillar Edit

    A hernyók "jellegzetes többlábú lárvák hengeres testtel, rövid mellkasi lábakkal és hasi prolegekkel (pszeudopodák)". [63] Van egy edzett (szklerotizált) fejkapszulájuk, rágásra alkalmas mandibulájuk (szájrészük) és puha, csőszerű, szegmentált testük van, amely hajszerű vagy egyéb kiemelkedésekkel, három pár valódi lábbal és további prolegekkel (max. öt pár). [2] A test tizenhárom szegmensből áll, amelyek közül három a mellkasi (T1, T2 és T3), tíz pedig a hasi (A1-től A10-ig). [21]

    Minden valódi hernyónak van egy fejjel lefelé fordított Y alakú vonala, amely a fej tetejétől lefelé halad. Az Y alakú vonal között helyezkedik el az elülső háromszög vagy az előlapok. A clypeus, amely a frontok alatt található, a két antenna között fekszik. A labrum a clypeus alatt található. A labrum közepén egy kis bevágás van, amelybe a levélszél belekapaszkodik, amikor a hernyó eszik. [64]

    A lárváknak selyemmirigyei vannak, amelyek a szeméremajkakon helyezkednek el. Ezek a mirigyek módosított nyálmirigyek. Ezeket a selyemmirigyeket használják selyem készítésére gubók és menedékek számára. [21] A labrum alatt találhatók a mandibulák. [64] A fej mindkét oldalán általában hat szár található közvetlenül a mandibulák felett. Ezek a szárak félkörben helyezkednek el. A szárak alatt egy-egy kis antennapár található, mindkét oldalon egy-egy. [21] [64]

    A mellkasnak három pár lába van, mindegyik szegmensen egy pár. A prothoraxnak (T1) van egy funkcionális spiracle, amely valójában a mesothoraxból (T2) származik, míg a metathoraxnak van egy csökkentett spiraculuma, amely kívülről nem nyitott, és a kutikula alatt fekszik. [59] : 114 A mellkasi lábak coxa-ból, trochanterből, combcsontból, tarsusból és karomból állnak, és alakjuk az egész rendben állandó. Azonban bizonyos levélbányászok esetében csökkentek, bizonyos Notodontidae esetében pedig megnyúltak. A Micropterigidae-nél a lábak három szegmensből állnak, mivel a coxa, a trochanter és a combcsont összenőtt. [59] : 114

    A háromtól hatig és tízig terjedő hasi szakaszon egy-egy húsosabb lábpár állhat. [21] A mellkasi lábakat valódi lábaknak, a hasi lábakat pedig prolegeknek nevezik. [64] A valódi lábak a Lepidoptera esetében alig változnak, kivéve bizonyos levélbányászok csökkenését és a Notodontidae családban a megnyúlást. [59] : 114 A prolegek hegyén számos kis horog található, amelyeket horgolt horgoknak neveznek. A Lepidoptera családok prolegjaik számában és elhelyezkedésében különböznek egymástól. Egyes lárvák, például a hüvelykujj (Geometridae) és a hurkapálca (Plusiinae) legfeljebb öt pár proleggel rendelkeznek, míg másoknak, például a Lycaenidae-nak és a csigahernyóknak (Limacodidae) teljesen hiányoznak a prolegek. [21] [64] Egyes levélbányász hernyóknál a hasfalon horgolások találhatók, amelyek csökkentett prolegek, míg más levélbányász fajoknál teljesen hiányoznak a horgolások. [65] A hasi spirálok a test mindkét oldalán, az első nyolc hasi szakaszon helyezkednek el. [64]

    A hernyóknak különböző típusú kiemelkedései vannak (szőrszálak), tüskék, szemölcsök, gumók és szarvak. A szőrszálak többféle színben kaphatók, és lehetnek hosszúak vagy rövidek egyenként, fürtökben vagy csomókban vékonyabbak, vagy a végén dúsabbak. A gerinc lehet a chalaza (egyetlen ponttal rendelkezik) vagy a sclus (több ponttal rendelkezik). A szemölcsök lehetnek kis dudorok vagy rövid kiemelkedések a testen. A gumók húsos testnyúlványok, amelyek vagy rövidek és dudorszerűek, vagy hosszúak és filamentálisak. Általában párban vagy egy vagy több szegmensben csoportosulva fordulnak elő. A szarvak rövidek, húsosak és egy pontra húzódnak. Általában a nyolcadik hasi szakaszon találhatók. [65]

    A Saturniidae, Limacodidae és Megalopygidae családok nagyszámú fajának szúrós hernyói vannak, amelyek mérgező szőrszálakkal rendelkeznek, amelyeket csalánszőrnek neveznek. Lonomia – brazil saturniid nemzetség – erős véralvadásgátló mérge miatt képes megölni az embert. [13] : 644 számos taxon hernyója, amelyek mérgező vegyszereket vontak ki a gazdanövényekből, vagy éles, csalánkiütéses szőrrel vagy tüskével rendelkeznek, aposematikus színezetet és jelöléseket mutatnak. [66]

    A hernyók ekdízisen mennek keresztül, és számos lárvaállapotuk van, általában öt, de fajonként változó. Az új kutikula puha, és lehetővé teszi a hernyó méretének és fejlődésének növekedését, mielőtt kemény és rugalmatlanná válna. Az utolsó ekdízis során a régi kutikula felhasad és kis golyóvá gömbölyödik a báb hátsó végén, és lárva exuvia néven ismert. [67] : 31

    A papilionida közönséges mormon két csillaga különböző álcázási sémákkal – madárürülékre és növényzetre emlékeztető


    Könyv leírása

    A számos és karizmatikus Lepidoptera a gerinctelen állatok egyik legszélesebb körben tanulmányozott csoportja. A molekuláris eszközök és a genomikai technikák fejlődése csökkentette a nagy méretek és tömeges tenyésztés szükségességét, és a lepkék modellrendszereit egyre gyakrabban használják széles körű kísérleti kérdések megvilágítására, valamint a lepkékre és lepkékre jellemző kérdésekre. A Lepidoptera molekuláris biológiája és genetikája a lepkékről szóló tanulmányok széles körű gyűjteményét mutatja be, amelyek különleges tulajdonságokkal rendelkező, speciális rovarokként kezelik őket, és modellrendszerként szolgálnak az élvonalbeli kutatásokhoz. A vezető kutatók evolúciós keretet adnak a lepkék és lepkék elhelyezéséhez az Élet fájára.

    A könyv bemutatja a selyemhernyó-genom megfejtésében és a lepkék ivari kromoszómáinak feltárásában elért előrehaladást. Új információkat tartalmaz a nemek meghatározásáról, az evolúcióról, valamint a pillangószárny-mintázatok, a szemek, a látás, a cirkadián órák, a kemoreceptorok és a szexuális kommunikáció fejlődéséről. A hozzászólók megvitatják a növényi gazdakör genetikáját és molekuláris biológiáját, valamint a Helicoverpa fő növénykártevő-nemzetség elleni védekezés lehetőségeit. Feltárják továbbá a rovarirtószer-rezisztencia növekedését, a veleszületett immunválaszt, a lepkék minigazdaszervezeteit a humán kórokozók és az antibiotikumok tesztelésére, valamint az intrahemocoeliás toxinok használatát a védekezésre. A könyv a poliDNS-vírust hordozó parazitoid darazsakról szóló tudósítással és a selyemhernyó első vírusrezisztencia-génjének klónozásával zárul.

    A lepkék és lepkék biológiájának és genetikájának megismerése új fajszelektív védekezési módszerekhez vezethet, dollármilliárdokat takaríthat meg a peszticidhasználatban, valamint megóvhatja a környezetet és az emberi egészséget – ami rendkívül fontossá teszi a növényvédelem stratégiáiról szóló részeket. Ez a könyv új utakat nyit meg a kutatási irodalom felé széles közönség számára, beleértve az entomológusokat, evolúciós és szisztematikus biológusokat, genetikusokat, fiziológusokat, biokémikusokat és molekuláris biológusokat.


    Biológia - Középiskolai rovargyűjtés és azonosítás - Biológia bibliográfiák - Harvard stílusban

    Az Ön bibliográfiája: Anic.ento.csiro.au. 2015. Hymenoptera | Mi ez a hiba?. [online] Elérhető: <http://anic.ento.csiro.au/insectfamilies/biota_details.aspx?OrderID=27447&BiotaID=29800&PageID=families> [Hozzáférés: 2015. március 29.].

    Ichneumonida darazsak - Ausztrál Múzeum

    Szövegben: (Ichneumonida darazsak – Ausztrál Múzeum, 2014)

    Az Ön bibliográfiája: Australianmuseum.net.au. 2014. Ichneumonida darazsak - Ausztrál Múzeum. [online] Elérhető: <http://australianmuseum.net.au/ichneumonid-wasps> [Hozzáférés: 2015. március 29.].

    Brisbane rovarok és pókok

    Egy bogár életének összefoglalása – befejezetlen metamorfózis

    Szövegben: (Brisbane rovarok és pókok, 2006)

    Az Ön bibliográfiája: Brisbane rovarok és pókok, 2006. Egy bogár életének összefoglalása – befejezetlen metamorfózis. [image] Elérhető: <http://www.brisbaneinsects.com/brisbane_insects/Buglife.htm> [Hozzáférés: 2015. március 28.].

    Szöcskék - ACRIDIDAE család

    Szövegben: (Szöcskék – ACRIDIDAE család, 2011)

    Az Ön bibliográfiája: Brisbaneinsects.com. 2011. Szöcskék - ACRIDIDAE család. [online] Elérhető: <http://www.brisbaneinsects.com/brisbane_grasshoppers/Acrididae.htm> [Hozzáférés: 2015. március 28.].

    Chew, P.

    A bogarak élete

    Szövegben: (Chew, 2006)

    Az Ön bibliográfiája: Chew, P., 2006. Egy bogár élete. [online] Brisbaneinsects.com. Elérhető: <http://www.brisbaneinsects.com/brisbane_insects/Buglife.htm> [Hozzáférés: 2015. március 28.].

    Chew, P.

    Ichneumonidae család – Ichneumon darazsak

    Szövegben: (Chew, 2013)

    Az Ön bibliográfiája: Chew, P., 2013. Ichneumonidae család – Ichneumon darazsak. [online] Brisbaneinsects.com. Elérhető: <http://www.brisbaneinsects.com/brisbane_ichneumonwasps/ICHNEUMONIDAE.htm> [Hozzáférés: 2015. március 29.].

    Lepidoptera lárvák parazitoidjai

    Szövegben: (Lepidopteran lárvák parazitoidjai, 2012)

    Az Ön bibliográfiája: Cottoncrc.org.au. 2012. Lepidoptera lárvák parazitoidjai. [online] Elérhető: <http://www.cottoncrc.org.au/industry/Publications/Pests_and_Beneficials/Cotton_Insect_Pest_and_Beneficial_Guide/Beneficials_by_common_name/Parasitoids_of_Lepidopteran_larva [0] Marchesed>_25.

    Pillangó életciklusa

    Szövegben: (A pillangók életciklusa, 2015)

    Az Ön bibliográfiája: Drexel Egyetem – A Drexel Egyetem Természettudományi Akadémiája, a Philadelphiai Természettudományi Múzeum. 2015. Pillangó életciklusa. [online] Elérhető: <http://www.ansp.org/explore/online-exhibits/butterflies/lifecycle/> [Hozzáférés: 2015. március 29.].

    Acrididae család

    Szövegben: (Acrididae család, 2015)

    Az Ön bibliográfiája: Ento.csiro.au. 2015. Acrididae család. [online] Elérhető: <http://www.ento.csiro.au/education/insects/orthoptera_families/acrididae.html> [Hozzáférés: 2015. március 28.].

    Mantodea - imádkozó mantidák

    Szövegben: (Mantodea - imádkozó mantidák, n.d.)

    Az Ön bibliográfiája: Ento.csiro.au. n.d. Mantodea - imádkozó mantidák. [online] Elérhető: <http://www.ento.csiro.au/education/insects/mantodea.html> [Hozzáférés: 2015. március 30.].

    Eurema hecabe

    Szövegben: (Eurema hecabe, 2015)

    Az Ön bibliográfiája: Lepidoptera.butterflyhouse.com.au. 2015. Eurema hecabe. [online] Elérhető: <http://lepidoptera.butterflyhouse.com.au/pier/hecabe.html> [Hozzáférés: 2015. március 29.].

    UF/IFAS Okeechobee Extension Service | Duranta / Arany harmatcsepp

    Szövegben: (UF/IFAS Okeechobee Extension Service | Duranta / Golden Dewdrop, 2012)


    A szag- és ízreceptor gének molekuláris evolúciója lepke rovarokban: adaptációjuk és fajlagosodásuk következményei

    A Lepidoptera (lepkékből és lepkékből álló) a rovarok egyik legnagyobb csoportja, amely több mint 160 000 leírt fajt tartalmaz. A kemorecepció fontos szerepet játszik abban, hogy ezek a fajok alkalmazkodjanak a fülkék széles skálájához, például növényi gazdákhoz, tojásrakási helyekhez és párokhoz. Ez a tanulmány a lepkék illatanyagának molekuláris evolúcióját vizsgálta.Vagy) és ízlelő receptor (Gr) gének a közelmúltban azonosított géneket használva Bombyx mori, Danaus plexippus, Heliconius melpomene, Plutella xylostella, Heliothis virescens, Manduca sexta, Cydia pomonella, és Spodoptera littoralis. Korlátozott számú esetet figyeltek meg nagy vonal-specifikus génexpanzió (kivéve a P. xylostella származás), valószínűleg a tandem génduplikáció elleni szelekció miatt. Erős tisztító szelekció zajlott le mind a lepkék szag-, mind ízlelő gének evolúciója során, amint azt az alacsony ω CodeML elemzéssel becsült értékek 0,0093 és 0,3926 között. A tisztítási szelekció azonban ezekben a receptorokban enyhült néhány aminosav helyén, ami szekvencia divergenciához vezetett, ami a pozitív szelekció előfutára ezeken a szekvenciákon. A pozitív szelekció jeleit csak néhány lókuszban mutattuk ki a leszármazási analízisből. A génnövekedés és -veszteség becslése arra utal, hogy a Lepidoptera közös ősének kevesebb volt Vagy gének a meglévő fajokhoz képest, és még inkább csökkent a számuk Gr gének, különösen a keserű receptor kládon belül. A Lepidoptera evolúciója során többszörös génnövekedés és néhány génvesztés következett be. A géncsalád bővülése összefüggésbe hozható a lepkefajok növényi gazdaszervezetekhez való alkalmazkodásával, különösen zárvatermő sugárzás után. A lepke nemi feromon receptor génjeinek filogenetikai analízise arra utalt, hogy kromoszómális transzlokációk többször is előfordultak. Új szexferomon receptorok keletkeztek tandem génduplikáció révén. Pozitív szelekciót észleltünk néhány aminosav helyén, amelyek az újonnan duplikált gének extracelluláris és transzmembrán régióiban találhatók, ami összefüggésbe hozható az új feromon receptorok evolúciójával.

    Ez az előfizetéses tartalom előnézete, hozzáférés az intézményen keresztül.


    Mód

    Az őshonos izolálása és azonosítása B. thuringiensis törzsek

    Szaúd-Arábia keleti régiójában található Al-Ahsa tartomány hat különböző régiójában végeztek talajmintát. Négy minta megművelt talajból (Al-Buhairia, Al-Batalieh, Ghubaiba falvak), kettő pedig nem művelt talajból (El-Qaarh és El-Shoabah hegységből) származik. A talaj felső rétegét eltávolítottuk, hogy elkerüljük a légköri UV-sugárzás életképességét romboló hatását Bt spórák. A mintákat cipzáras zacskókba helyeztük és hűtőszekrényben 4 °C-on tároltuk az izolálásig (Palma 2015). A talajmintákat 0,85%-os sóoldatban (1 g talaj/sóoldat) szuszpendáltuk. Minden mintát 250 fordulat/perc sebességgel ráztunk 1 órán át. Az összes talajmintát 20 percig 75 °C-os hőmérsékletnek tesszük ki, hogy a legtöbb nem spóraképző sejtet elpusztítsuk. Mindegyik talajszuszpenzióból körülbelül 0,2 ml-t oltottunk tápagar (NA) táptalajra, és az inkubációs idő 24 óra volt 30 °C-on (Daniel et al. 2018). Baktériumkolóniák kiállítása Bt A fenotípushoz hasonlóan lapos, matt fehér színű, száraz és egyenetlen határokat gondosan felszedtünk, és tápanyag-agar táptalajra tenyésztettük az egytelepes izoláláshoz (Palma 2015). A kiválasztott telepeket T3 agar táptalajon (literenként: 3 g tripton, 2 g triptóz, 1,5 g élesztőkivonat, 0,05 M nátrium-foszfát [pH 6,8] és 0,005 g MnCl (Travers és mtsai. 1987)) növesztettük, majd inkubáltuk. 30 °C-on 72 órán keresztül. A sejtjei Bt a T3 agar táptalajon növesztett potenciális izolátumokat Gram-festéssel, valamint spórafestő reagensekkel festettük. Összes Bt törzseket vegetatív sejtek, spórák és parasporális zárvány jelenlétére vizsgálták (Padole et al. 2017). Bt Az izolátumokat tovább jellemezték a kataláz, ureáz, kazeináz, zselatináz, amiláz és lecitináz enzimaktivitásának vizsgálatával Cinar és munkatársai szerint. (2008). Összes Bt törzsek kódneveket kaptak a felismerés érdekében.

    Inszekticid kristályfehérjék (ICP) előállítása és befogása

    A sejtjei Bt A potenciális izolátumokat T3 táptalajon tenyésztettük 30 °C-on és 200 rpm-en 7 napig spóraindukció céljából. Spóra szuszpenziója Bt Az izolátumot 15 000 fordulat/perc sebességgel és 4 °C-on 10 percig centrifugáltuk a spóra-kristály keverékek összegyűjtésére. A tiszta spórakristályokat fixáltuk, és 10 nm-es Au/Pd-vel porlasztásos bevonattal vontuk be SC7620 Mini-sputter coater parasporális kristályfehérjét, majd LEO440 pásztázó elektronmikroszkóppal 20 kV-os nyaláb mellett befogtuk (1. ábra) (Yilmaz et al. 2017). ).

    Pásztázó elektronmikroszkópos (SEM) A Bt1, Bt9, Bt10 és Bt11 Bt törzsek, amelyek spóraképződést (S) és endokristályokat (C) mutatnak, a Bt-sejtek tipikus jellemzői.

    Inszekticid kristályfehérjék (ICP) elemzése

    A parasporális kristályok fehérjéit szolubilizáltuk, jellemeztük, és 10%-os SDS-PAGE-val hozzáférhetővé tettük Laemmli (1970) szerint, kisebb módosításokkal az alábbiak szerint: Egy éjszakán át tartó LB-tenyészet alikvotjai. Bt törzsek és BtA -HD1 referencia törzset folyékony T3 táptalajra injektáltuk (Bozlagan et al. 2010) 30 °C-on több mint 3 napig. Tíz milliliterről Bt a húslevest 7500 rpm-en 20 percig 4 °C-on végzett centrifugálással gyűjtöttük össze. A pelletált fehérjekristályokat ezután 3 ml sterilizált desztillált vízben (SDW) szuszpendáltuk 4 °C-on. A pelletált fehérjéket kétszer mostuk az SDW-vel azonos körülmények között, majd a pelletált kristályfehérjéket 100 μl steril desztillált vízben és 100 μl 2X törési pufferben oldottuk, amely 125 mM Tris-HCl (pH 6,8) nátrium-dodecil-szulfátot tartalmazott. SDS) 4%, β-merkaptofenol 0,2%, glicerin 50%, brómfenol kék 0,02%. Az Bt A pelletet jól összekevertük, 10 percig forraltuk, majd 1 percig hűlni hagytuk, végül 15 percig 10 000 fordulat/perc sebességgel centrifugáltuk, és 12%-os SDS poliakrilamid gél lapra töltöttük.

    Szkennelés B. thuringiensis törzsek számára kiáltás gének DNS izolálása

    A vizsgálatokat a következőképpen végeztük: 15 μl Bt tiszta egyetlen telepet vettünk ki tápagar tenyészetből, és 150 μl SDW-ben szuszpendáltuk, a szuszpenziót 5 percig forraltuk, majd szobahőmérsékletre hűtöttük, és 10 000 fordulat/perc sebességgel centrifugáltuk 4 °C-on 10 percen keresztül. Ezt a nyers DNS-t tartalmazó felülúszót PCR-amplifikációban használták fel Carozzi és munkatársai szerint. (1991).

    Oligonukleotid PCR primerek

    Öt pár univerzális primert (közvetlen és fordított) használtunk az 5 felderítéséhez Kiáltás- géneket kódoló méret szerint a PCR termékekből. A PCR-termékek szekvenciáit, felismert génjeit és várható Cry-gén-méreteit az 1. táblázat mutatja be.

    Amplifikációs reakcióelegy

    Mindegyikből két mikroliter DNS-t (körülbelül 20 ng) izoláltunk Bt törzs, Taq DNS polimeráz enzim (1 egység), 10X puffer (2 μl), 2 μl MgCl2 (2500 μM), 2 μl dNTP-k (2500 μM), 2 μl primer (10 pmol) és 14,8 μl H2O (Miniatis 1989).

    DNS-amplifikációs ciklusok

    Perkin-Elmer GeneAmp PCR rendszert (2400-as modell), amelyet hőmérséklet-ciklusos programmal használunk, Temnykh és munkatársai leírása szerint alkalmaztuk. (2000). Az amplifikációs lépések a következők szerint történtek: egyetlen ciklus 94 °C-on fut 5 percig, majd 30 ciklus, amely 94 °C-on 1 percig tartó denaturációból áll, egyetlen lépés 55 °C-on 1 percig, a következő egy ciklus szintézis lépés 72 °C-on 2 percig, majd egy kiterjesztési lépés 72 °C-on 7 percig, és egy végső 4 °C-os infinitív. Minden kísérlethez negatív és pozitív kontrollok társultak. A negatív kontrollt DNS-templát hiányában, a pozitív kontrollt pedig standard templáttal futtattuk. A PCR-termékeket elektroforézissel értékeltük, 1,4%-os agaróz gélek felhasználásával, majd az elektroforézis befejezése után a géleket etidium-bromiddal megfestettük, a fényképek rögzítéséhez UV fényt használtunk. A Pharmaciától vásárolt száz bázispár DNS-létrát alkalmaztuk a PCR-termék sávméreteinek eléréséhez.

    Rovarok

    A vizsgálatban felhasznált rovarok az egyiptomi gyapotlevélféreg, Spodoptera littoralis (Boisd.) (Lepidoptera: Noctuidae), és a gyümölcslégy, Drosophila melanogaster Meigen (Diptera: Drosophilidae). Mindkét rovarból Ibrahim Hamed és Marwa El-Saleh asszony, az egyiptomi Mezőgazdasági Kar Növényvédelmi Tanszékének munkatársa biztosította a szükséges instarsokat mindkét rovarból.

    Bioassay

    Spóra-kristály keverékei Bt Az izolátumokat Ammouneh és munkatársai szerint állítottuk elő. (2011). Egyetlen kolónia előzetesen azonosítva Bt törzseket 100 ml T3 folyékony tápközegben tenyésztettük, és rázógépen (150 fordulat/perc) 30 °C-on 5 napig inkubáltuk. Kristályfehérjék és Bt A spórákat összegyűjtöttük és 1000 mM NaCl-ban szuszpendáltuk, 10 000 fordulat/perc sebességgel centrifugáltuk 4 °C-on 10 percig, kétszer mostuk SDW-vel, később SDW-ben szuszpendáltuk, és fagyasztva szárítottuk. Mindkét Bt kristályokat és spóraporokat használnak fel további kísérleti munkákban. Az őshonos bio-rovarölő képességei Bt a törzsvizsgálatokat ebben a munkában a gyapotlevélféreg lárvái ellen tesztelték (S. littoralis) és a gyümölcslégy (D. melanogaster). 3. és 4. stádiumban vizsgált lárvák közül tízet helyeztünk 30 ml-es műanyag poharakba 3 ismétlésben, összesen 30 lárvával minden koncentrációban, amelyet 27 ± 2 °C-on, 60-65% relatív páratartalom mellett és 14:10 között tartottunk. h (világos:sötét). Öt milliliter (ug/ml –1 ) minden natív Bt törzs liofilizált porát kristályok és spórák keverékéből juttattuk a lárvákba és szobahőmérsékleten hagytuk (Aramideh et al. 2010). A mortalitás pontozásának eredményeit minden kezelésnél 24 és 48 óra elteltével rögzítettük. Az LC értékek kiszámításához a Probit elemző program 1.3-as verzióját használtuk50 és lejtőn. A biológiai vizsgálati kísérleteket spóra-kristály keverékkel végeztük, amelyet mindegyikből összegyűjtöttünk Bt külön-külön izolált, és az elkészített sorozatkoncentráció 25 és 50 μg/ml -1 között volt steril desztillált vízben (dH)2O). A vizsgált gyapotlevélféreg lárvák esetében levélmerítés technikát alkalmaztunk. A friss és tiszta leveleket 30 másodpercre mártottuk minden egyes eredeti izolátum koncentrációba Bt spóra-kristály keveréket külön-külön, és instar lárváiba kínálják S. littoralis lárvák. A kontroll céljára ugyanannyi lárvát tettünk ki dH-ba mártott tiszta leveleknek2Ó csak. Ezenkívül 20 g-ot a frissen készített mesterséges gyümölcslégytakarmányból jól összekevertünk minden egyes eredeti izolátummal Bt koncentrációk.

    Natív törzsek molekuláris tipizálása

    Az inszekticid biológiai vizsgálati eredmények alapján a törzsek Bt A Diptera és Lepidoptera ellen a legmagasabb inszekticid aktivitást kifejező 16S rRNS molekuláris tipizálására Rochelle és mtsai. (1995). A 16S rRNS univerzális primereket, a 8F 5′AGT TGA TCC TGG CTC AG 3′ és a 1492R 5′TAC CTT GTT ACG ACT T3′ primereket használtuk a 16S rRNS elemzéséhez. DNS-templátokat izoláltunk a 4 natív (Bt) a kísérletben használt törzsek. A reakciót a következőképpen hajtottuk végre: 50 μl reakcióelegy tartalmaz DNS templát puffert, 16S gén primert, Taq polimeráz, dNTP-k és MgCl2. A PCR-programot Bio-RAD i-cyclerben hajtották végre a következő lépésekkel: (a) 94 °C 40 másodpercig beállítva a denaturációhoz, (b) 55 °C 50 másodpercig beállítva a lágyításhoz, (c) 72 °C 1,5 percre beállítva a meghosszabbítást 35 cikluson keresztül, a denaturálás kezdeti hőmérséklete 94 °C volt 3 percig és 72 °C 7 percig a végső meghosszabbításhoz. 1,5%-os agaróz gélelektroforézist alkalmaztunk a PCR kimenetelű fragmensek elemzésére. Az agaróz géleket a (Promega Wizard SV Gel és PCR Clean Up-system Kit katalógusszám: A9282) beszerzett tisztítókészlet katalógusa szerint tisztítottuk. A tisztított PCR-termékeket szekvenálásra küldtük a Macrogen-be (Dél-Korea). Az NCBI adatbázis blast algoritmusát használták a natív összehasonlítás beállításához Bt sorozatok, és a dokumentált Bt sorozatok (Bt1, Bt9, Bt10, és Bt11) NCBI-ban tárolták (Altschul et al. 1990).

    A natív törzsek törzsfejlődése Bt1, Bt9, Bt10, és Bt11

    A 16S rRNS génszekvenciákat összehasonlítottuk, és a nukleotid-nukleotid standard BLAST algoritmus alapján bevittük a GeneBank adatbázisba. A MEGA5 szoftvert használtuk a szekvenciák egymáshoz igazításához, elemeztük a filetikus vonalat, és megszerkesztettük a fát. A szomszéd-csatlakozási módszer a taxonok evolúciójának történetére következtetett. Az elemzett taxonok evolúciós történetének reprezentálására ezer ismétlést vettünk, és ebből a bootstrap konszenzusfára lehet következtetni (Saitou és Nei 1987).


    54 diák részesült Erickson Discovery ösztöndíjban az alapképzésből

    UNIVERSITY PARK, Pa. – Erickson Discovery Grants-t 54 egyetemi hallgató kapott Penn State-ben az egyetemi kutatás költségeinek fedezésére.

    Az Erickson Grant programot az Egyetemi Oktatási Hivatal kezeli, és segít fedezni a kutatás költségeit, például kellékek, anyagok, könyvek, szoftverek és utazási költségeket adatgyűjtés céljából.A támogatás az ösztöndíj és az alkotói folyamat minden területére felhasználható, ideértve a koncepcióalkotást, a pályázatírást, a módszerek azonosítását és megvalósítását, valamint az eredmények kommunikációját. Minden projekt a kar felügyelete alatt zajlik. Bár a projektnek elsősorban a hallgató saját munkájának kell lennie, egy nagyobb oktatói kutatás része lehet.

    A program nevét Rodney A. Erickson, Penn State 17. elnökének tiszteletére nevezték el.

    Az idei Erickson Grant díjazottjai Penn állam számos főiskolájáról és egyeteméről származnak:

    • Austin Albright, „Impact of Honor Concerns on Emotional Supression and Mental Health”, üzletvezetés/marketing, Penn State York
    • Sophie Anderlind, „A vas transzportfehérjék kortizol hatásának vizsgálata a placenta sejtekben”, biológia, Penn State Behrend
    • Shravan Asthana, „Az RBM8a szerepének vizsgálata a szinapszisok kialakulásában – glial lencse”, biológia, Eberly College of Science
    • Brittany Bacorn: „A közösségi média használata hatással van a rögeszmés-kényszeres zavarban szenvedők tüneteire a COVID-19 világjárvány idején?” pszichológia, Penn State Beaver
    • Harshraj Bandyopadhyay, „Fotósokszorozó csövek lokális hűtésének tanulmányozása termoelektromos hűtőeszközök használatával”, fizika, Eberly College of Science
    • Taylor Berek, „A Cryo-EM-en keresztüli szinonim mutációk által okozott fehérje DDLB szubpopuláció-változásának vizsgálata”, orvosbiológiai mérnök, College of Engineering
    • Mihir Bhatnagar, „Exomoon Habitability around M-Dwarfs using Retrograde Orbits”, gépészmérnök, College of Engineering
    • Rachel Blansfield, „A felnőttkori kötődési stílus és a terápiás szövetség közötti társulás: metaanalitikus tanulmány”, pszichológia, College of the Liberal Arts
    • Abriana Cain, „A fizikai aktivitás és az energiakorlátozás hatása a daganatos hipoxiára és a vérerek normalizálására a 4T1.2 egér mellrák modellben”, táplálkozástudományok, Egészségügyi és Humánfejlesztési Főiskola
    • Mitchell Corsi, „Viharvíz kezelése bioszen felhasználásával extrém éghajlati eseményekben”, környezeti rendszerek tervezése, Föld- és Ásványtudományi Főiskola
    • Alyssa Curry, A tavaszi fiasítás manipuláció hatása a varroa atkák populációira a mézelő méhkolóniákban”, környezeti erőforrás-gazdálkodás, College of Agricultural Sciences
    • Sydney Danso, „Óriási impulzusérzékelés gyakorisága a rákköd pulzárból”, biokémia, Penn State Abington
    • Eilene B. Deng, „A DSIF régióinak azonosítása a NELF toborzásban”, biokémia és molekuláris biológia, Eberly College of Science
    • Molly Ehrig, „A jelzőmolekulák hatása az Euprymna-Vibrio szimbiózis törzsdiverzitására”, biológia, Eberly College of Science
    • Gregory Ellsworth, „Rockfall Monitoring in PA”, földmérő mérnök, Penn State Wilkes-Barre
    • Geneva Flarend, „A stressz hatásainak vizsgálata az opioidhasználati magatartásokra”, biokémia és molekuláris biológia, Eberly College of Science
    • Anna Foltz, „Gene Trapping in Drosophila melanogaster”, biokémia és molekuláris biológia, Eberly College of Science
    • Kaylee Foor, „A szorongásos és depressziós tünetek faji és etnikai hovatartozásának különbségei, valamint az oktatással kapcsolatos stresszorok szerepe”, pszichológia, College of the Liberal Arts
    • Quentin Hales, „Numerical Solutions to the Forced Soliton Equation”, fizika, Penn State Fayette
    • Jack Ibinson, „The Role of IRE1a and p53 in UVB Sensitivity of Human Keratinocytes”, immunológia és fertőző betegségek, College of Agricultural Sciences
    • Abbey Kollar, „Tápanyag- és kémiai visszanyerés vizsgálata a hidrotermikus cseppfolyósítás újrahasznosított vizes fázisából”, vegyészmérnök, Műszaki Főiskola
    • Mengde Liu: „A rák célzott terápiáival szembeni rezisztencia sztochasztikus szimulációi, amelyek kompromisszumot javasolnak az evolúciós pályák között”, orvosbiológiai mérnök, Műszaki Főiskola
    • Sindy Liu, „A pH hatása a fáziselválasztott cseppekre mint RNS-rekeszekre”, kémia, Eberly College of Science
    • Nicole Lookfong, „Endocannabinoid Pharmacology of PTSD”, genetika és fejlődésbiológia, Penn State Harrisburg
    • Tara Lyons, „Elméleti tanulmányok fémes klaszterekről nanográfén a jövő anyagaihoz”, törvényszéki tudomány, Penn State Fayette
    • Katherine McRury, „Élni a természettel: Etikai modell az együttélésen alapuló építészethez”, építészet, Művészeti és Építészeti Főiskola
    • Abigail Melendez, „A lepkék (pillangók és lepkék) biológiai sokféleségének megértése a Penn State Behrend Campuson gyűjtéssel és azonosítással, DNS vonalkódolási technológiával”, biológia, Penn State Erie, The Behrend College
    • Jacob Moyer, „Somatostatin Neuropeptide, Potential Therapeutics for binge Drinking Behavior and Anxiety”, biokémia és molekuláris biológia, Eberly College of Science
    • Lauren Onweller, „A rák biomarkereinek azonosítása és a célzott CAR T-sejtterápia fejlesztése az akut limfoblasztos leukémia kezelésére”, orvosbiológiai mérnök, Műszaki Főiskola
    • Aayushi Patel „A Cannabis sativából (ipari kenderből) származó kannabinoidok antimikrobiális potenciáljának feltárása” biológia, genetika és fejlesztés Penn State Harrisburg
    • Vanessa Peduzzi, „Akut mielogén leukémia kezelése egerekben Δ12-prosztaglandin-J2 lebegő mátrix tabletták beadásával”, immunológia és fertőző betegségek, College of Agricultural Sciences
    • Hannah Perrelli: „A víz fegyverkezése: Hogyan fokozta a gyarmati politika a COVID 19 aránytalan pusztítását a navajo nemzetben”, földrajz, Föld- és Ásványtudományi Főiskola
    • Jack Piazza, „Investigating the Relationship Between Algorithmic Randomness and Uniform Distribution Modulo One”, matematika, Eberly College of Science
    • Chloe Roberts, „Evaluating Ixodes scapularis burdens on Sylvilagus floridanus Pennsylvania külvárosában”, állatorvosi és orvosbiológiai tudományok, College of Agricultural Sciences
    • Kelsey Ruhlman, „A SETDB1 kifejeződése és funkciója a házipók, Parasteatoda tepidariorum petefészkeiben”, genetika és fejlődésbiológia, Penn State York
    • Tanner Sherry, „Impedancia alapú módszer az extracelluláris térdinamika megfigyelésére a terjedő depolarizáció során”, mérnöki tudomány, Műszaki Főiskola
    • G. Michael Shott Jr., „Beats, Rhymes and Life: An Autoetnography”, kommunikációs művészetek és tudományok, Penn State Berks
    • Jordan Sigler, „Szemből szembefordulni a depresszióval: A depresszió súlyosságának hatása az érzelmek észlelésére”, pszichológia, College of the Liberal Arts
    • Maria Smereka, „Az AggTag fluorogén kimutatási módszer optimalizálása SNAP- és Sortase-címkékkel”, neurobiológia, Eberly College of Science
    • Emily Snow, „Effects of Nanofiber Orientation on Cell Morphology and Early Osteoinductive Regulation for Cell Morphology and Early Osteoinductive Regulation for Human Mesenchymal Stem Cell Differentiation”, Biomedical engineering, College of Engineering
    • Elizabeth Soucy, „A kortizol hatása az emberi szoptatásban és a tej összetételében”, táplálkozástudományok, Egészségügyi és Emberi Fejlesztési Főiskola
    • Edward Joseph Spagnuolo, „A paleogén Pakisztán egyetlen ismert fosszilis flórája: az India-Ázsia ütközés feltárása paleobotanikán keresztül”, geobiológia, Föld- és Ásványtudományi Főiskola
    • Zachary Stein, „A kinetikus mozgás megvalósítása kerámiás művészetben”, kerámiával foglalkozó képzőművészeti alapképzés, Művészeti és Építészeti Főiskola
    • Jacquelyn Stochel, „Konkrétsági értékelési adatok gyűjtése idősebb felnőtteknél”, kommunikációs tudományok és rendellenességek, Egészségügyi és Emberfejlesztési Főiskola
    • Rebecca Stroschein, „Az augmentatív és alternatív kommunikációt (AAC) használó egyének és az egészségügyi szakemberek közötti interakciót támogató online képzés értékelése”, kommunikációs tudományok és rendellenességek, Egészségügyi és Humánfejlesztési Főiskola
    • David Taglieri, „Urban Street Networks: Roundabouts vs. Traditional Intersections”, mélyépítés, College of Engineering
    • Olivia Tancredi, „A nanorészecskék felületi kémiájának hatásainak vizsgálata a töltésátvitelre és a fotokatalitikus reakcióképességre”, kémia, Eberly College of Science
    • Matthew Venable, „Új citrátpolimer alapú, in situ injektálható ortopéd kompozitok fejlesztése”, mérnöki tudomány, Műszaki Főiskola
    • Natalie Walter, „A bomlás építészete”, építészet, Művészeti és Építészeti Főiskola
    • Zhijie Wang, „A Hofmeister-ionok hatása a Rhodamine 6G optikai tulajdonságaira”, kémia, Eberly College of Science
    • Lauren Willett, „A fiatal csillagobjektumok akkréciós aláírásainak értelmezése a VÍRUS-spektrográfból”, csillagászat és asztrofizika, Eberly College of Science
    • Tanner Wolf, „A szterikusan akadályozott ciklofánok gyűrűnyitási metatézisének polimerizációja”, kémia, Eberly College of Science
    • Alexander Wu: „Mozart „porosz” kvartettjeinek és Beethoven op. 5 csellószonáta”, zenei előadás, Művészeti és Építészeti Főiskola
    • Grant Zemanek: „Segíthet az élőhelykezelés a nem célfajokon?” biológia, Eberly College of Science

    Pályázni Erickson Discovery Grantre

    Az Erickson Discovery Grant részletei az egyetemi kutatási és ösztöndíjas mentorálás weboldalán találhatók. A pályázatok általában októberben nyílnak meg és februárban zárulnak le. A támogatásban részesülőket a tavaszi félév végén értesítik.


    Tartalom

    A Hepialidae az Exoporia infrarend messze legváltozatosabb csoportja. A 60 nemzetség legalább 587 jelenleg világszerte elismert fajt tartalmaz ezen primitív lepkékből. A nemzetségek Fraus (Ausztráliában endemikus), Gazoryctra (Holtarktikus), Afrotheora (dél-afrikai), ill Antihepialus (afrikai) tartják a legprimitívebbnek, négy nemzetséget és körülbelül 51 fajt tartalmaznak, amelyek többnyire reliktuális déli gondwani elterjedésűek, és jelenleg elkülönülnek a Hepialidae-tól sensu stricto amelyek természetes, származtatott csoportot alkothatnak. [2] A legváltozatosabb nemzetségek a Oxycanus 73 fajjal, Endoclita 60 fajjal, Thitarodes 51 fajjal és Cibyra 50 fajjal az Exoporia átfogó katalógusa nyomán. [2] A sok nemzetség kapcsolatai még nem jól megalapozottak, lásd alább egy rendezett szinonimikus általános ellenőrzőlistát, [2] és a navigációhoz a Taxoboxot.

    A Hepialidae családot nagyon primitívnek tekintik, számos szerkezeti különbséggel más lepkékhez képest, beleértve a nagyon rövid antennákat és a funkcionális orr vagy frenulum hiányát (részletekért lásd Kristensen, 1999: 61–62). [3] A többi Exoporia-hoz hasonlóan a spermiumok egy külső csatornán keresztül jutnak el a petesejtbe az ostium és a petehártya között. Más nonditrysian lepkéknek közös kloákája van. [2] A lepkék egyneműek, hasonló elülső és hátsó szárnyakkal, és néha a Macrolepidoptera „tiszteletbeli” tagjai közé tartoznak, bár archaikusak. Szigorúan véve filogenetikailag túlságosan bazálisak, és mikrolepkéket alkotnak, bár a hepialidek a nagyon kicsi lepkéktől a 250 mm-es szárnyfesztávolságig terjednek. Zelotypia. [2] Néha nagy méretük és feltűnő színmintáik miatt népszerűbb és taxonómiai figyelem irányult rájuk, mint a legtöbb "mikro". Sok faj erős szexuális dimorfizmust mutat, a hímek kisebbek, de határozottabbak, mint a nőstények, vagy magasan fekvő nőstények. Pharmacis és Aoraia mutatják a "brachypteros" szárnycsökkentést. [4]

    A Hepialidae ősi szárazföldeken világszerte elterjedt, kivéve az Antarktiszt, de meglepő kivételekkel Madagaszkáron, a karibi szigeteken és Afrikában a trópusi Nyugat-Afrikában. Azt még tisztázni kell, hogy ezek a hiányzások valódiak-e Aenetus cohici nem rég fedezték fel Új-Kaledóniában. [5] A keleti és a neotrópusi régiókban a hepialidák az esőerdőkben diverzifikálódnak, de ez nyilvánvalóan nem így van az afrotrópusokon. [2] A hepialidák többnyire csekély szórási képességgel rendelkeznek, és nem fordulnak elő óceáni szigeteken, kivéve Phassodes Fidzsi-szigeteken és Nyugat-Szamoán, valamint néhány faj Japánban és a Kurile-szigeteken. Míg a típus helysége Eudalaca sanctahelena St Helena távoli szigetéről származik, ez Dél-Afrika hibája. [2]

    A fürge lepkék általában krepuszkulárisak, és egyes fajok lekeket alkotnak, amelyekről úgy gondolják, hogy önállóan is keletkeztek a nemzetségben Ogygioses (Palaeosetidae). [3] A legtöbb nemzetségben a hímek gyorsan repülnek a szűz nőstényekhez, amelyek illattal hívogatnak. Más nemzetségekben a szűz nőstények "összeállnak" széllel szemben, hogy megjelenjenek a hímek, [6] amelyek pézsma feromont bocsátanak ki a metathoracalis sípcsontokon lévő pikkelyekből. A nemi szerepek felcserélésének ilyen esetekben vizuális jelei is lehetnek: az európai szellempásztor hímjei talán a leggyakrabban észlelt fajok, fehérek, kísértetiesek és feltűnőek, amikor alkonyatkor leket alkotnak. [7] Néha külön-külön lebegnek, mintha egy fonalra függesztve, vagy nyolcas mozdulattal repülnének. [2] Egyes feromonok kémiai szerkezetét elemezték. [8]

    A nőstény nem egy meghatározott helyre rakja le petéit, hanem repülés közben szétszórja ("sugározza") azokat, néha hatalmas számban (egy nősténytől 29 000-et rögzítettek). Trictena, [9] ami feltehetően a Lepidoptera világrekordja). A kukacszerű lárvák [10] többféleképpen táplálkoznak. Valószínűleg minden Exoporia rejtett lárvákat, így selymes alagutakat készítenek mindenféle szubsztrátumon. Egyes fajok avarral, gombákkal, [11] mohákkal, pusztuló növényzettel, páfrányokkal, tornasperménnyel, valamint egy- és kétszikű növények széles körével táplálkoznak. [2] [12] Nagyon kevés bizonyíték van a gazdanövények specializálódására, míg a dél-afrikai fajok Leto Vénusz a fára korlátozódik Virgilia capensis ez az "ökológiai monofágia" esete lehet. [2] Néhányan lombozattal táplálkoznak (az ausztrál „oxyacanine” nemzetségek, amelyek behúzhatják a lombozatot a táplálkozási alagútjukba: Nielsen et al., 2000: 825). A legtöbb a föld alatt, finom gyökerekkel táplálkozik, legalábbis korai csecsemőkorban, néhányuk pedig belsőleg táplálkozik a gazdanövényeik szárában vagy törzsében lévő alagutakban. A talajon áthaladó, gyökeret tápláló lárvák selyemmel bélelt alagutakat készítenek. A bábozás előtt függőleges alagutat készítenek, amely akár 10 cm mély is lehet, a kijárattal közel a talajfelszínhez. [13] A bábok ezután fel és le tudnak mászni, hogy alkalmazkodjanak a hőmérséklet változásaihoz és az áradásokhoz. [14] Mielőtt a kifejlett lepke kikelne, a báb félig kinyúlik a talaj felszínén. A báb hasi szakaszán háti tüskék sorakoznak, mint a Heteroneura többi alsó tagjában. [3]

    A kínai orvoslás nagymértékben hasznosítja a hernyótámadó gombákból összegyűjtött "múmiákat". Ophiocordyceps sinensis, és ezek drága összetevőt képezhetnek. [2] [15] [16] A witchetty grub (amelyek néha hepialid lárvák) népszerű táplálékforrás, különösen az ausztrál őslakosok körében. Közép-Amerikában és Dél-Amerikában hepialid lárvákat is fogyasztanak. [17] Néhány faj azonban a Wiseana, Oncopera, Oxycanus, Fraus és Dalaca Ausztráliában, Új-Zélandon és Dél-Amerikában a legelők kártevőinek számítanak. [2]


    Nézd meg a videót: Identifikacija - Bojana Svalina (Lehet 2022).